Цены снижены! Бесплатная доставка контурной маркировки по всей России

Лада ч рей: LADA XRAY кроссовер — Официальный сайт LADA

Содержание

LADA XRAY кроссовер — Официальный сайт LADA

• Подушка безопасности водителя
• Подушка безопасности переднего пассажира с функцией отключения
• Подголовники задних сидений 2 шт.
• Крепления для детских сидений ISOFIX
• Блокировка задних дверей от открывания детьми
• Автоматическое запирание дверей при начале движения
• Автоматическое включение аварийной сигнализации при экстренном торможении
• Автоматическое отпирание дверей и включение аварийной сигнализации при столкновении
• Иммобилайзер
• Охранная сигнализация
• LED-дневные ходовые огни
• Система экстренного оповещения ЭРА-ГЛОНАСС
• Антиблокировочная система с электронным распределением тормозных сил (ABS, EBD)
• Система вспомогательного торможения (BAS)
• Система электронного контроля устойчивости (ESC) с функцией отключения
• Противобуксовочная система (TCS)
• Система помощи при трогании на подъеме (HSА)
• Защита двигателя и подкапотного пространства

• Бортовой компьютер

• Подсказчик переключения передач в комбинации приборов
• Заднее сиденье с раскладной спинкой в пропорции 60/40
• Панель приборов. Цвет черный
• Обивка сидений ткань. Цвет черный
• Розетка 12V на центральной консоли

• Усилитель рулевого управления
• Регулируемая по высоте рулевая колонка
• Регулировка ремней безопасности передних сидений по высоте
• Воздушный фильтр салона
• Легкая тонировка стекол
• Складной ключ
• Центральный замок с дистанционным управлением
• Электростеклоподъемники передних дверей
• Аудиоподготовка

• Наружные зеркала с боковыми указателями поворота в цвет кузова

• 15» стальные диски
• Колпаки колес декоративные
• Запасное стальное колесо временного использования 15»

• Подушка безопасности водителя
• Подушка безопасности переднего пассажира с функцией отключения
• Подголовники задних сидений 2 шт.
• Крепления для детских сидений ISOFIX
• Блокировка задних дверей от открывания детьми
• Автоматическое запирание дверей при начале движения
• Автоматическое включение аварийной сигнализации при экстренном торможении
• Автоматическое отпирание дверей и включение аварийной сигнализации при столкновении
• Иммобилайзер
• Охранная сигнализация
• LED-дневные ходовые огни
• Система экстренного оповещения ЭРА-ГЛОНАСС

• Антиблокировочная система с электронным распределением тормозных сил (ABS, EBD)
• Система вспомогательного торможения (BAS)
• Система электронного контроля устойчивости (ESC) с функцией отключения
• Противобуксовочная система (TCS)
• Система помощи при трогании на подъеме (HSА)
• Защита двигателя и подкапотного пространства

• Бортовой компьютер
• Подсказчик переключения передач в комбинации приборов
• Заднее сиденье с раскладной спинкой в пропорции 60/40
• Панель приборов. Цвет черный
• Обивка сидений ткань. Цвет черный
• Розетка 12V на центральной консоли

• Усилитель рулевого управления
• Регулируемая по высоте рулевая колонка
• Регулировка ремней безопасности передних сидений по высоте
• Воздушный фильтр салона
• Легкая тонировка стекол
• Складной ключ
• Центральный замок с дистанционным управлением
• Электростеклоподъемники передних дверей
• Кондиционер
• Охлаждаемый вещевой ящик
• Аудиоподготовка

• Наружные зеркала с боковыми указателями поворота в цвет кузова
• 15» стальные диски
• Колпаки колес декоративные
• Запасное стальное колесо временного использования 15»

• Подушка безопасности водителя
• Подушка безопасности переднего пассажира с функцией отключения

• Подголовники задних сидений 2 шт.
• Крепления для детских сидений ISOFIX
• Блокировка задних дверей от открывания детьми
• Автоматическое запирание дверей при начале движения
• Автоматическое включение аварийной сигнализации при экстренном торможении
• Автоматическое отпирание дверей и включение аварийной сигнализации при столкновении
• Иммобилайзер
• Охранная сигнализация
• LED-дневные ходовые огни
• Система экстренного оповещения ЭРА-ГЛОНАСС
• Антиблокировочная система с электронным распределением тормозных сил (ABS, EBD)
• Система вспомогательного торможения (BAS)
• Система электронного контроля устойчивости (ESC) с функцией отключения
• Противобуксовочная система (TCS)
• Система помощи при трогании на подъеме (HSА)
• Защита двигателя и подкапотного пространства

• Бортовой компьютер
• Подсказчик переключения передач в комбинации приборов
• Заднее сиденье с раскладной спинкой в пропорции 60/40
• Панель приборов. Цвет черный
• Обивка сидений ткань. Цвет черный
• Противосолнечный козырек пассажира с зеркалом
• Розетка 12V на центральной консоли

• Усилитель рулевого управления
• Регулируемая по высоте рулевая колонка
• Регулировка ремней безопасности передних сидений по высоте
• Сиденье водителя с регулировкой по высоте
• Воздушный фильтр салона

• Легкая тонировка стекол
• Складной ключ
• Центральный замок с дистанционным управлением
• Электростеклоподъемники передних дверей
• Электростеклоподъемники задних дверей
• Подогрев передних сидений
• Электропривод и обогрев наружных зеркал
• Кондиционер
• Охлаждаемый вещевой ящик
• Мультифункциональное рулевое колесо
• Аудиосистема (2DIN, FM/AM с функцией RDS, USB, AUX, Bluetooth, Hands free), 4 динамика

• Наружные зеркала с боковыми указателями поворота в цвет кузова
• Наружные ручки дверей в цвет кузова
• 15» стальные диски
• Колпаки колес декоративные
• Запасное стальное колесо временного использования 15»

• Подушка безопасности водителя
• Подушка безопасности переднего пассажира с функцией отключения
• Подголовники задних сидений 2 шт.
• Крепления для детских сидений ISOFIX
• Блокировка задних дверей от открывания детьми
• Автоматическое запирание дверей при начале движения
• Автоматическое включение аварийной сигнализации при экстренном торможении
• Автоматическое отпирание дверей и включение аварийной сигнализации при столкновении
• Иммобилайзер
• Охранная сигнализация
• LED-дневные ходовые огни
• Система экстренного оповещения ЭРА-ГЛОНАСС
• Антиблокировочная система с электронным распределением тормозных сил (ABS, EBD)
• Система вспомогательного торможения (BAS)
• Система электронного контроля устойчивости (ESC) с функцией отключения
• Противобуксовочная система (TCS)
• Система помощи при трогании на подъеме (HSА)
• Защита двигателя и подкапотного пространства

• Бортовой компьютер
• Подсказчик переключения передач в комбинации приборов
• Заднее сиденье с раскладной спинкой в пропорции 60/40
• Панель приборов. Цвет черный
• Обивка сидений ткань. Цвет черный
• Противосолнечный козырек пассажира с зеркалом
• Розетка 12V на центральной консоли

• Усилитель рулевого управления
• Регулируемая по высоте рулевая колонка
• Регулировка ремней безопасности передних сидений по высоте
• Сиденье водителя с регулировкой по высоте
• Воздушный фильтр салона
• Легкая тонировка стекол
• Усиленная тонировка задних стекол
• Складной ключ
• Центральный замок с дистанционным управлением
• Электростеклоподъемники передних дверей
• Электростеклоподъемники задних дверей
• Подогрев передних сидений
• Электропривод и обогрев наружных зеркал
• Обогрев ветрового стекла
• Датчики парковки задние
• Датчики дождя и света
• Климат-контроль
• Охлаждаемый вещевой ящик
• Мультифункциональное рулевое колесо

• Аудиосистема (2DIN, FM/AM с функцией RDS, USB, AUX, Bluetooth, Hands free), 4 динамика

• Наружные зеркала с боковыми указателями поворота черного цвета
• Наружные ручки дверей в цвет кузова
• 16» легкосплавные диски оригинальные
• Запасное стальное колесо временного использования 15»

• Подушка безопасности водителя
• Подушка безопасности переднего пассажира с функцией отключения
• Подголовники задних сидений 2 шт.
• Крепления для детских сидений ISOFIX
• Блокировка задних дверей от открывания детьми
• Автоматическое запирание дверей при начале движения

• Автоматическое включение аварийной сигнализации при экстренном торможении
• Автоматическое отпирание дверей и включение аварийной сигнализации при столкновении
• Иммобилайзер
• LED-дневные ходовые огни
• Система экстренного оповещения ЭРА-ГЛОНАСС
• Антиблокировочная система с электронным распределением тормозных сил (ABS, EBD)
• Система вспомогательного торможения (BAS)
• Система электронного контроля устойчивости (ESC) с функцией отключения
• Противобуксовочная система (TCS)
• Система помощи при трогании на подъеме (HSА)
• Защита двигателя и подкапотного пространства

• Бортовой компьютер
• Подсказчик переключения передач в комбинации приборов

• Заднее сиденье с раскладной спинкой в пропорции 60/40
• Панель приборов. Цвет черный
• Обивка сидений ткань. Цвет черный
• Противосолнечный козырек пассажира с зеркалом
• Розетка 12V на центральной консоли

• Усилитель рулевого управления
• Регулируемая по высоте рулевая колонка
• Регулировка ремней безопасности передних сидений по высоте
• Сиденье водителя с регулировкой по высоте
• Воздушный фильтр салона
• Легкая тонировка стекол
• Складной ключ
• Центральный замок с дистанционным управлением
• Электростеклоподъемники передних дверей
• Электростеклоподъемники задних дверей
• Подогрев передних сидений
• Электропривод и обогрев наружных зеркал
• Кондиционер
• Охлаждаемый вещевой ящик
• Мультифункциональное рулевое колесо
• Аудиосистема (2DIN, FM/AM с функцией RDS, USB, AUX, Bluetooth, Hands free), 4 динамика

• Наружные зеркала с боковыми указателями поворота в цвет кузова
• Наружные ручки дверей в цвет кузова
• 15» стальные диски
• Колпаки колес декоративные
• Запасное стальное колесо временного использования 15»

• Подушка безопасности водителя
• Подушка безопасности переднего пассажира с функцией отключения
• Подголовники задних сидений 2 шт.
• Крепления для детских сидений ISOFIX
• Блокировка задних дверей от открывания детьми
• Автоматическое запирание дверей при начале движения
• Автоматическое включение аварийной сигнализации при экстренном торможении
• Автоматическое отпирание дверей и включение аварийной сигнализации при столкновении
• Иммобилайзер
• LED-дневные ходовые огни
• Система экстренного оповещения ЭРА-ГЛОНАСС
• Антиблокировочная система с электронным распределением тормозных сил (ABS, EBD)
• Система вспомогательного торможения (BAS)
• Система электронного контроля устойчивости (ESC) с функцией отключения
• Противобуксовочная система (TCS)
• Система помощи при трогании на подъеме (HSА)
• Защита двигателя и подкапотного пространства

• Бортовой компьютер
• Подсказчик переключения передач в комбинации приборов
• Заднее сиденье с раскладной спинкой в пропорции 60/40
• Панель приборов. Цвет черный
• Обивка сидений ткань. Цвет черный
• Противосолнечный козырек пассажира с зеркалом
• Розетка 12V на центральной консоли

• Усилитель рулевого управления
• Регулируемая по высоте рулевая колонка
• Регулировка ремней безопасности передних сидений по высоте
• Сиденье водителя с регулировкой по высоте
• Воздушный фильтр салона
• Легкая тонировка стекол
• Усиленная тонировка задних стекол
• Складной ключ
• Центральный замок с дистанционным управлением
• Электростеклоподъемники передних дверей
• Электростеклоподъемники задних дверей
• Подогрев передних сидений
• Электропривод и обогрев наружных зеркал
• Обогрев ветрового стекла
• Датчики парковки задние
• Датчики дождя и света
• Климат-контроль
• Охлаждаемый вещевой ящик
• Мультифункциональное рулевое колесо
• Аудиосистема (2DIN, FM/AM с функцией RDS, USB, AUX, Bluetooth, Hands free), 4 динамика

• Наружные зеркала с боковыми указателями поворота черного цвета
• Наружные ручки дверей в цвет кузова
• 16» легкосплавные диски оригинальные
• Запасное стальное колесо временного использования 15»

• Подушка безопасности водителя
• Подушка безопасности переднего пассажира с функцией отключения
• Подголовники задних сидений 3 шт.
• Крепления для детских сидений ISOFIX
• Блокировка задних дверей от открывания детьми
• Автоматическое запирание дверей при начале движения
• Автоматическое включение аварийной сигнализации при экстренном торможении
• Автоматическое отпирание дверей и включение аварийной сигнализации при столкновении
• Иммобилайзер
• Охранная сигнализация
• LED-дневные ходовые огни
• Противотуманные фары
• Система экстренного оповещения ЭРА-ГЛОНАСС
• Антиблокировочная система с электронным распределением тормозных сил (ABS, EBD)
• Система вспомогательного торможения (BAS)
• Система электронного контроля устойчивости (ESC) с функцией отключения
• Противобуксовочная система (TCS)
• Система помощи при трогании на подъеме (HSА)
• Защита двигателя и подкапотного пространства

• Бортовой компьютер
• Подсказчик переключения передач в комбинации приборов
• Заднее сиденье с раскладной спинкой в пропорции 60/40
• Панель приборов. Цвет (по выбору) черный/коричневый
• Обивка сидений комбинированная ткань/экокожа. Цвет (по выбору) черный/коричневый
• Противосолнечный козырек пассажира с зеркалом
• Розетка 12V на центральной консоли
• Подсветка мест входа-выхода в передних дверях

• Усилитель рулевого управления
• Регулируемая по высоте рулевая колонка
• Регулировка ремней безопасности передних сидений по высоте
• Сиденье водителя с регулировкой по высоте
• Воздушный фильтр салона
• Легкая тонировка стекол
• Складной ключ
• Центральный замок с дистанционным управлением
• Электростеклоподъемники передних дверей
• Электростеклоподъемники задних дверей
• Подогрев передних сидений
• Электропривод и обогрев наружных зеркал
• Обогрев ветрового стекла
• Датчики парковки задние
• Датчики дождя и света
• Климат-контроль
• Охлаждаемый вещевой ящик
• Мультифункциональное рулевое колесо
• Аудиосистема (2DIN, FM/AM с функцией RDS, USB, AUX, Bluetooth, Hands free), 4 динамика

• Наружные зеркала с боковыми указателями поворота в цвет кузова
• Наружные ручки дверей в цвет кузова
• 16» легкосплавные диски
• Запасное стальное колесо временного использования 15»

• Подушка безопасности водителя
• Подушка безопасности переднего пассажира с функцией отключения
• Подголовники задних сидений 3 шт.
• Крепления для детских сидений ISOFIX
• Блокировка задних дверей от открывания детьми
• Автоматическое запирание дверей при начале движения
• Автоматическое включение аварийной сигнализации при экстренном торможении
• Автоматическое отпирание дверей и включение аварийной сигнализации при столкновении
• Иммобилайзер
• LED-дневные ходовые огни
• Противотуманные фары
• Система экстренного оповещения ЭРА-ГЛОНАСС
• Антиблокировочная система с электронным распределением тормозных сил (ABS, EBD)
• Система вспомогательного торможения (BAS)
• Система электронного контроля устойчивости (ESC) с функцией отключения
• Противобуксовочная система (TCS)
• Система помощи при трогании на подъеме (HSА)
• Защита двигателя и подкапотного пространства

• Бортовой компьютер
• Подсказчик переключения передач в комбинации приборов
• Заднее сиденье с раскладной спинкой в пропорции 60/40
• Панель приборов. Цвет (по выбору) черный/коричневый
• Обивка сидений комбинированная ткань/экокожа. Цвет (по выбору) черный/коричневый
• Противосолнечный козырек пассажира с зеркалом
• Розетка 12V на центральной консоли
• Подсветка мест входа-выхода в передних дверях

• Усилитель рулевого управления
• Регулируемая по высоте рулевая колонка
• Регулировка ремней безопасности передних сидений по высоте
• Сиденье водителя с регулировкой по высоте
• Воздушный фильтр салона
• Легкая тонировка стекол
• Усиленная тонировка задних стекол
• Складной ключ
• Центральный замок с дистанционным управлением
• Электростеклоподъемники передних дверей
• Электростеклоподъемники задних дверей
• Подогрев передних сидений
• Электропривод и обогрев наружных зеркал
• Обогрев ветрового стекла
• Датчики парковки задние
• Kамера заднего вида с динамическими линиями
• Датчики дождя и света
• Климат-контроль
• Охлаждаемый вещевой ящик
• Мультифункциональное рулевое колесо
• Мультимедийная система LADA EnjoY Pro с встроенными сервисами Яндекс. Авто (8’’ TFT-IPS ёмкостный HD дисплей, FM, 2 USB, Bluetooth, голосовое управление, Hands Free со сдвоенным микрофоном и функцией шумоподавления, Apple CarPlay, Android Auto), 6 динамиков

• Наружные зеркала с боковыми указателями поворота в цвет кузова
• Наружные ручки дверей в цвет кузова
• 16» легкосплавные диски
• Запасное стальное колесо временного использования 15»

• Подушка безопасности водителя
• Подушка безопасности переднего пассажира с функцией отключения
• Подголовники задних сидений 3 шт.
• Крепления для детских сидений ISOFIX
• Блокировка задних дверей от открывания детьми
• Автоматическое запирание дверей при начале движения
• Автоматическое включение аварийной сигнализации при экстренном торможении
• Автоматическое отпирание дверей и включение аварийной сигнализации при столкновении
• Иммобилайзер
• LED-дневные ходовые огни
• Противотуманные фары
• Система экстренного оповещения ЭРА-ГЛОНАСС
• Антиблокировочная система с электронным распределением тормозных сил (ABS, EBD)
• Система вспомогательного торможения (BAS)
• Система электронного контроля устойчивости (ESC) с функцией отключения
• Противобуксовочная система (TCS)
• Система помощи при трогании на подъеме (HSА)
• Защита двигателя и подкапотного пространства

• Бортовой компьютер
• Подсказчик переключения передач в комбинации приборов
• Заднее сиденье с раскладной спинкой в пропорции 60/40
• Панель приборов. Цвет (по выбору) черный/коричневый
• Обивка сидений комбинированная ткань/экокожа. Цвет (по выбору) черный/коричневый
• Противосолнечный козырек пассажира с зеркалом
• Розетка 12V на центральной консоли
• Подсветка мест входа-выхода в передних дверях

• Усилитель рулевого управления
• Регулируемая по высоте рулевая колонка
• Регулировка ремней безопасности передних сидений по высоте
• Сиденье водителя с регулировкой по высоте
• Воздушный фильтр салона
• Легкая тонировка стекол
• Усиленная тонировка задних стекол
• Складной ключ
• Центральный замок с дистанционным управлением
• Электростеклоподъемники передних дверей
• Электростеклоподъемники задних дверей
• Подогрев передних сидений
• Электропривод и обогрев наружных зеркал
• Обогрев ветрового стекла
• Датчики парковки задние
• Kамера заднего вида с динамическими линиями
• Датчики дождя и света
• Климат-контроль
• Охлаждаемый вещевой ящик
• Мультифункциональное рулевое колесо
• Мультимедийная система LADA EnjoY Pro с встроенными сервисами Яндекс. Авто (8’’ TFT-IPS ёмкостный HD дисплей, FM, 2 USB, Bluetooth, голосовое управление, Hands Free со сдвоенным микрофоном и функцией шумоподавления, Apple CarPlay, Android Auto), 6 динамиков

• Наружные зеркала с боковыми указателями поворота в цвет кузова
• Наружные ручки дверей в цвет кузова
• 16» легкосплавные диски
• Запасное стальное колесо временного использования 15»

LADA XRAY | официальный дилер Лада Х Рей (Икс Рей) в Санкт-Петербурге


Новый LADA XRAY – компактный кроссовер, обеспечивающий максимальный комфорт от вождения, высокий уровень безопасности и уверенность при маневрировании. Он адаптирован к любым дорожным условиям и суровому климату. Концепцию модели нового поколения полностью отражает её название: «X» – кроссовер, «R» – отдых, «A» – активность, «Y» – молодость.

Модельный ряд LADA XRAY 2020-2021 года представлен базовой моделью и версией Cross с расширенными возможностями. Каждая модификация кроссовера создана для активного ритма жизни, для смелых и решительных людей, для покорения бескрайних просторов нашей страны.

Официальный дилер «ЛАДА-ЦЕНТР» предоставляет возможность купить автомобили XRAY в кредит, в лизинг и по системе «трейд-ин» на максимально выгодных условиях. Кроме того, мы осуществляем техническое и сервисное обслуживание, предлагаем индивидуальные программы кредитования и страхования, скидки и подарки в рамках действующих акций, а также широкий ассортимент оригинальных аксессуаров и дополнительного оборудования.

Записаться на тест-драйв кроссовера, уточнить варианты комплектации и цены на LADA XRAY 2020-2021 года в Санкт-Петербурге в наличии или задать любой другой интересующий вопрос можно, позвонив специалистам отдела продаж по многоканальному телефону или лично посетив один из наших дилерских центров.

XRAY в наличии
Спецпредложения


Салонов в России

Положительных отзывов

Авто в наличии

комплектации и цены от официального дилера

Колёсная база

2592

Размер колёс

215/50/R17

Ширина задней колеи

1546

Ширина передней колеи

1503

Объем багажника мин/макс, л

361/1207

Объём топливного бака, л

50

Полная масса, кг

1650

Снаряженная масса, кг

1295

Количество передач

5

Коробка передач

механика

вариатор

Тип привода

передний

Подвеска и тормоза

Задние тормоза

дисковые

Передние тормоза

дисковые вентилируемые

Тип задней подвески

полунезависимая, пружинная

полунезависимая, торсионная

Тип передней подвески

независимая, пружинная

Эксплуатационные показатели

Максимальная скорость, км/ч

180

162

Марка топлива

АИ-92

Разгон до 100 км/ч, с

10. 9

12.8

Расход топлива, л город

Расход топлива, л город/смешанный

Расход топлива, л город/трасса/смешанный

9. 7/6.3/7.5

Расход топлива, л смешанный

7.3

Диаметр цилиндра и ход поршня, мм

82 × 84

78 × 83. 5

Количество цилиндров

4

Максимальная мощность, л.с./кВт при об/мин

122 / 90 при 6050

113 / 83 при 5500

Максимальный крутящий момент, Н*м при об/мин

170 при 3700

152 при 4000

Объем двигателя, см³

1774

1598

Расположение двигателя

переднее, поперечное

Расположение цилиндров

рядное

Степень сжатия

10. 5

10.7

Тип двигателя

Тип наддува

нет

Название рейтинга

Оценка безопасности

Аккумуляторная батарея

Запас хода на электричестве, км

Lada X-RAY — автонастрой

С 2012 год поклонники отечественного автопрома ожидают выхода новой модели производства АвтоВАЗ – Лады Х-Рей. И недаром, ведь Ладу ХРей можно назвать одним из самых успешных дебютантов АвтоВАЗа – после того, как показ модели буквально «взрорвал» автомобильный мир, концепт стал новым лицом стилистики отечественного автопроизводителя. Так что же это за автомобиль? Давайте разберемся поподробнее. Лада Х-Рей характеристики, фото и цены вы сможете найти в этой статье.

На первый взгляд может показаться, что Lada ХРей – это внедорожник или кроссовер, но такими терминами это авто не позиционируется даже инженерами АвтоВАЗа. По мнению представителей компании, Лада Х-Рей – это, так сказать, обычный «высокий хэтчбек». Соответственно, транспортное средство теперь занимает собственную своеобразную нишу.

Экстерьер Лада Х-Рей

Что касается внешнего вида, то как вы сами можете посмотреть на фото, новая Х-Рей смотрится очень современно и привлекательно. Передняя часть транспортного средства выполнена в так называемом X-стиле, а хромические элементы только подчеркивают великолепный дизайн авто. На дверях Лада Х-Рей вы можете увидеть X-образные выштамповки. Благодаря низким обвесам и покатой крыше, а также тому, что лобовое стекло машины достаточно наклонено, авто еще более уверенно и динамично управляется на дороге.

 

 

 

 

В целом же новая Лада Х-Рей своим внешним видом значительно отличается от того образца, который был представлен публике в 2014 году. Модель двухгодичной давности была трехдверной, а раздутые формы и прочие стильные элементы кузова только подчеркивали уверенность и мощь авто.

Однако предсерийная модель имеет определенные изменения. В частности, оптика в ней теперь не такая заточенная, больше округлая. Решетка радиатора стала чуть больше по своим размерам, а интерфейс капота был незначительно изменен. Контур переднего бампера остался таким же, однако снизу появилась так называемая губа. По утверждению разработчиков, она способствует оптимизации показателей аэродинамики. Также следует отметить, что теперь бампер оборудован и круглыми противотуманными фарами.

Интерьер ХРэй

Интерьер Лады Х-Рей не менее интересный и оригинальный. Приборная панель незатейлива в целом по дизайну, однако по факту она достаточно информативна. Все приборы установлены в трех так называемых колодцах, а справа от водительского места вы можете увидеть экран бортового компьютера. Руль выполнен очень оригинально и современно, и имеет интересный четырехспицевый дизайн с ярко выраженным рельефом. В более «фаршированных» версиях Лада Х-Рей на руле также установлены кнопки для управления различными функциями.

Фото салона автомобиля

 

 

 

Посредине торпеды разработчики установили семидюймовый ЖК-дисплей, вокруг которого расположены оригинальные с виду дефлекторы вентиляции. Чуть ниже установлен блок управления системой климат-контроля. Но это все характерно для автомобилей полной комплектации. Что касается более дешевых версий авто, то здесь все гораздо проще – вместо дисплея установлена обычная магнитола с простыми дефлекторами кондиционера или печки. В целом внутренняя отделка салона выполнена из жесткого текстурного пластика, а сами сиденья обтянуты приятной на ощупь тканью.
Передние кресла не только красивы с виду, но и очень удобны благодаря функции боковой поддержки и возможности регулировки. Так называемый высокий хэтчбек внутри оснащен множеством различных мини-отсеков для мелких вещей.

Основные из них расположены:

  • в дверях, здесь находятся большие карманы с подстаканниками
  • под передним пассажирским сидением есть выдвигающийся ящик
  • под торпедой также расположены несколько отсеков и подстаканников

Заднее сиденье было правильно спроектировано, в результате чего пассажиры сзади никогда не будут себя чувствовать, «как шпроты в банке». Пассажирам предлагается довольно большой запас свободного пространства, но все без фанатизма.

Перейдем к объему багажника. В состоянии разложенных задних сидений объем багажника составляет 376 литров, в то время как при сложенных сидениях этот показатель увеличивается до 1382 л. Следует отметить, что при складывании сидений площадка получается идеально ровной. На дне багажника вы можете увидеть запасное колесо диаметром 15 дюймов, несмотря на то, что по факту авто оборудуется 16-дюймовыми колесами.

Трансмиссия Lada X-Ray

Потребителю предлагается на выбор одна из двух трансмиссий. Х-Рей оборудуется пятиступенчатой «механикой» и роботизированной КПП. Что касается механической коробки то, как заявили в свое время представители авто-концерна, АвтоВАЗ решил отказаться от собственных КПП. Теперь Лада Х-Рей будет комплектоваться «механикой» JR5 французского производства. Такое решение было принято в результате того, что инженеры АвтоВАЗа поняли, что трансмиссии французского производства работают гораздо тише отечественных.

Что касается «робота», то Х-Рей будет укомплектована той же коробкой передач, которая устанавливается на Ладу Весту. Эта роботизированная коробка была разработана на основе традиционной отечественной «механики», но в процессе создания агрегата участвовали специалисты из немецкой компании ZF. Зарубежные разработчики помогли российским специалистам модифицировать электронную часть. Система сцепления будет комплектоваться продукцией от всемирно известного разработчика Валео. Следует отметить, что установка роботизированной трансмиссии обусловлена не только невысокой ценой, но и экономией топлива. Кроме того, по утверждениям представителей концерна, теперь водитель получает возможность безболезненного старта движения на этой коробке в сильный мороз. В свою очередь, традиционные гидтротрансформаторные «автоматы» требуют немного времени, чтобы прогреться перед началом езды.

Технические характеристики Лада Х-Рей

Лада Хрей оборудуется одним из трех четырехцилиндровых двигателей, которые полностью соответствуют требованиям экологического стандарт «Евро-5»:
Самый простой вариант – автомобиль оснащен 1. 6-литровым ДВС ВАЗ 21129 и 16-клапанным газораспределительным механизмом. Мощность автомобиля составляет 106 л.с. Коробка передач – механическая «пятиступка». Согласно заявленным характеристикам, до 100 км/ч Х-Рей может разогнаться за 11.9 сек, максимальная скорость в этом случае составляет 170 км/ч. Что касается расхода топлива, то по городу он составит около 7.5 л.

Средний вариант Лада Х-Рей будет оснащен 16-клапанным ДВС производства «Рено-Ниссан» объемом 1.6 л. ГРМ в этом двигателе будет цепным. Мощность авто, оснащенного механической КПП, составляет 114 «лошадок». Машина сможет разогнаться до 100 км/ч за 10.3 сек, а максимально возможная скорость разгона составляет 171 км/ч. Расход топлива в данном случае составит около 6.9 л в смешанном режиме езды.

Самая «совершенная» версия Лады Х-Рей оборудуется мотором ВАЗ 21176 объемом 1.8 л. Мощность двигателя составляет 122 л.с. В этом случае машинка оснащается 5-ступенчатой роботизированной коробкой передач. До «сотки» авто разгонится за 10. 9 сек, а максимально возможная скорость составит 183 км/ч. Что касается расхода топлива, то в режиме езды по городу он не должен превышать 7.1 л. Данные технические характеристики достаточно конкурентны в этом ценовом диапазоне.

Шасси автомобиля Xray

Хэтчбек Лада Х-Рей представляет собой переднеприводное транспортное средство. Собственно, именно это стало причиной того, что Х-Рей не получил статус кроссовера. Однако на сегодняшний день множество других моделей так называемых городских внедорожников оборудуются только передним приводом.

По сообщению представителей АвтоВАЗа, Х-Рей оборудуются подвеской от Рено Сандеро и платформой шасси типа В0. По своей конструкции она представляет собой независимую схему со стойками МакФерсон. Задняя часть авто оснащена торсионной балкой, а конструкция в целом оборудована газовыми амортизаторами Tenecco и пружинами Mubea.

Полноприводная версия получит название Х-Рей Кросс, эта модификация в АвтоВАЗе считается уже кроссовером. Авто оборудуется платформой шасси от Renault Duster. Таким образом, Лада будет иметь независимую «ходовку». Спереди установлены стойки МакФерсон, а сзади многорычажная система. Также следует отметить, что полноприводные версии оснащаются электромагнитной муфтой Ниссан. Обе версии оборудованы дисковыми тормозами на передней оси, а также ГУРом.

Комплектация и цены Лада Х-Рей

Цена на Ладу Х-Рей, как и во всех других случаях, будет зависеть от комплектации. В продаже представлены несколько версий:

  • Оптима.
  • Комплектация Топ.
  • Топ Престиж.
Актуальная цена Лада Х-Рей, комплектаций 2016 года

 

 

 

 

Даже в самой простой версии Lada X-Ray Оптима комплектация превзошла ожидания автоэкспертов. В частности, в ней уже имеются передние подушки безопасности, а также различные системы, такие как ABS, ASR, ESP, EBD и EBA. В целом комплектация Х-Рей выглядит достаточно солидно, поскольку она оснащена 16-дюймовыми «титанами», светодиодами в оптике, а также повторителями поворотов на зеркалах. Что касается интерьера, то здесь все тоже неплохо – передние стеклоподъемники, функция настройки руля по наклону, медиа-система с четырьмя динамиками, Блютуз, бортовой компьютер и мультируль. В автомобили с мощностью двигателя 110 «лошадок» добавляются кондиционер, а также система подогрева передних сидений.

В Топ версии ручки дверей будут выкрашенными, также добавятся «противотуманки» и даже система для правильной парковки — парктроник. Кроме того, комплектация дополняется электрическим приводом настройки зеркал, а также их обогревом, мультимедийной системой с GPS и семидюймовым экраном. Акустика авто модернизирована.

Лучшая комплектация Топ престиж имеет все функции, представленные выше. Помимо прочего, авто также оборудуется датчиками дождя, света, системой климат-контроля, обогревом ветрового стекла и даже камерой заднего вида! Кроме того, в версии Топ Престиж появится тонировка. Более полная информация, цена и комплектации представлены выше на картинках. Удачи в выборе характеристики и комплектации будущего автомобиля, если вам понравилась статья, то не забудьте поделиться ссылкой в социальных сетях.

В Ивановской области всмятку разбилась машина, в которой ехали трое детей (фото)

Для детей старше 16 лет. Газета рекламы, объявлений и новостей «Частник» — одна из самых популярных в Иваново и Ивановской области — представлена в Интернет-пространстве. Теперь с помощью Интернет-версии издания Вы можете разместить рекламу в газете, которую знает вся Ивановская область Подробнее

Сегодня «Частник» — это поставщик важнейшей бизнес-информации для деловых людей Ивановской области. Это рекламная газета с максимумом сведений, необходимых для потребителей и предпринимателей. Вот почему размещение рекламы в газете — это отличный способ найти своего клиента. Портал Частник.ru позволяет узнать самые последние новости политической, экономической, общественной и культурной сфер города Иваново и Ивановской области в режиме онлайн. Информацию, опубликованную в ленте новостей Частник.ru, активно используют федеральные информационные агентства и местные органы власти и СМИ. Портал предлагает своим посетителям сервис поиска по базе из около 70 тысяч актуальных строчных сообщений о купле-продаже всевозможной тематики: авто-мото, биржа труда, работа, вакансии, гаражи, для дома и быта, животные и растения, знакомства, жилая и коммерческая недвижимость, оборудование, стройматериалы, текстиль, потери и находки, бытовая техника, услуги и предложения, пассажирские и грузовые перевозки, а также многое другое. Каждый посетитель имеет возможность подать частные бесплатные и платные объявления с главной страницы сайта, разместить объявления в печатной версии газеты «Частник», ознакомиться с тарифами и дать рекламу в газету, осуществить оплату за размещение объявлений с помощью электронных платежных систем. На главной странице портала можно посмотреть электронную версию последних номеров газеты «Частник-Понедельник», «Частник-Среда», «Частник-Пятница», «Частник Шуя», специального выпуска Текстильного вестника «Ивановская Мануфактура» и ивановского журнала для молодоженов «Свадебное настроение». Узнавайте новости Ивановской области! Подавайте рекламу в газету и находите своих клиентов вместе с Частником Скрыть

Автоцентр АНТ — Главная

HYUNDAI CRETA

2020, U4G, 1.6 л, ( л/с), Бензиновый, Механическая, Передний

1 068 000 Р

1 168 000 Р

Забронировать

HYUNDAI CRETA

2020, PGU, 1.6 л, ( л/с), Бензиновый, Механическая, Передний

1 062 000 Р

1 162 000 Р

Забронировать

NISSAN Qashqai MY21 2. 0L 2WD CVT SE+

2021, Черный, 2 л, (144 л/с), Бензиновый, Вариатор, Передний

1 944 000 Р

1 864 000 Р

Забронировать

HYUNDAI SONATA

2020, Y2E, 2 л, ( л/с), Бензиновый, Автоматическая, Передний

1 864 000 Р

1 814 000 Р

Забронировать

NISSAN MURANO 3. 5 4WD HIGH PLUS

2021, Белый, 2 л, (144 л/с), Бензиновый, Вариатор, Передний

3 400 000 Р

3 200 000 Р

Забронировать

HYUNDAI SOLARIS

2020, PGU, 1.6 л, ( л/с), Бензиновый, Механическая, Передний

881 000 Р

Забронировать

HYUNDAI SOLARIS

2020, RHM, 1. 6 л, ( л/с), Бензиновый, Автоматическая, Передний

1 037 000 Р

Забронировать

с пробегом одобрено ант

Лада 4×4 2121 Нива

2015, Зеленый, 1700 л, (83 л/с), Бензин, Механическая, 4WD

444 000 Р

Забронировать

с пробегом одобрено ант

Лада Веста

2018, Серый, 1600 л, (106 л/с), Бензин, Механическая, Передний

613 000 Р

Забронировать

с пробегом одобрено ант

Nissan Qashqai

2017, Белый, 2000 л, (144 л/с), Бензин, Вариатор, Передний

1 425 000 Р

Забронировать

с пробегом одобрено ант

Toyota Land Cruiser

1998, Серебристый, 4500 л, (211 л/с), Бензин, Механическая, 4WD

785 000 Р

Забронировать

с пробегом одобрено ант

Hyundai Creta

2018, Черный, 1600 л, (123 л/с), Бензин, Механическая, Передний

1 077 000 Р

Забронировать

с пробегом одобрено ант

Toyota Camry

2016, Белый, 2500 л, (181 л/с), Бензин, Автоматическая, Передний

1 787 000 Р

Забронировать

с пробегом одобрено ант

Kia Sorento

2013, Серый, 2400 л, (175 л/с), Бензин, Автоматическая, 4WD

1 427 000 Р

Забронировать

с пробегом одобрено ант

Hyundai Tucson

2007, Черный, 2700 л, (175 л/с), Бензин, Автоматическая, 4WD

675 000 Р

Забронировать

Произошла ошибка при настройке пользовательского файла cookie

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности. Если ваш браузер не принимает файлы cookie, вы не можете просматривать этот сайт.


Настройка вашего браузера для приема файлов cookie

Существует множество причин, по которым cookie не может быть установлен правильно. Ниже приведены наиболее частые причины:

  • В вашем браузере отключены файлы cookie. Вам необходимо сбросить настройки вашего браузера, чтобы он принимал файлы cookie, или чтобы спросить вас, хотите ли вы принимать файлы cookie.
  • Ваш браузер спрашивает вас, хотите ли вы принимать файлы cookie, и вы отказались. Чтобы принять файлы cookie с этого сайта, нажмите кнопку «Назад» и примите файлы cookie.
  • Ваш браузер не поддерживает файлы cookie. Если вы подозреваете это, попробуйте другой браузер.
  • Дата на вашем компьютере в прошлом. Если часы вашего компьютера показывают дату до 1 января 1970 г., браузер автоматически забудет файл cookie. Чтобы исправить это, установите правильное время и дату на своем компьютере.
  • Вы установили приложение, которое отслеживает или блокирует установку файлов cookie. Вы должны отключить приложение при входе в систему или проконсультироваться с системным администратором.

Почему этому сайту требуются файлы cookie?

Этот сайт использует файлы cookie для повышения производительности, запоминая, что вы вошли в систему, когда переходите со страницы на страницу. Чтобы предоставить доступ без файлов cookie потребует, чтобы сайт создавал новый сеанс для каждой посещаемой страницы, что замедляет работу системы до неприемлемого уровня.


Что сохраняется в файле cookie?

Этот сайт не хранит ничего, кроме автоматически сгенерированного идентификатора сеанса в cookie; никакая другая информация не фиксируется.

Как правило, в cookie-файлах может храниться только информация, которую вы предоставляете, или выбор, который вы делаете при посещении веб-сайта. Например, сайт не может определить ваше имя электронной почты, пока вы не введете его. Разрешение веб-сайту создавать файлы cookie не дает этому или любому другому сайту доступа к остальной части вашего компьютера, и только сайт, который создал файл cookie, может его прочитать.

Платформа гибридных биосенсоров BRET-FRET для оптогенетики, химического скрининга и визуализации in vivo

Конструирование плазмиды

Комплементарная ДНК (кДНК), кодирующая mTurquoise, и кДНК, кодирующая mTurquoise-GL, были получены от Joachim Goedhart 43 . кДНК для Turquoise2-GL, mTurquoise2 и Turquoise2 были получены сайт-специфическим мутагенезом с помощью ПЦР. Были введены следующие мутации: I146F (для Turquoise2-GL и mTurquoise2) 43 и K206A (для Turquoise2-GL).Прототип ERK-биосенсора активности FRET, EKAREVnes, состоит из ECFP и YPet для донорных и акцепторных флуоресцентных белков соответственно 19 . В дальнейшем белки, происходящие из бирюзы, и ECFP вместе называются CFP. Точно так же белки, производные YFP, включая YPet и Venus, вместе называются YFP. Чтобы сконструировать биосенсор hyBRET для активности ERK, hyBRET-ERK, кДНК ECFP в EKAREVnes была заменена на PCR-амплифицированную кДНК, кодирующую слитый белок, состоящий из Turquoise2-GL dC10, Gly-Thr и RLuc8 S257G dN3, с использованием рестрикционного расщепления с последующим перевариванием. путем сборки ДНК с помощью набора для клонирования In-Fusion HD (Takara Bio, Otsu, Japan).Точно так же CFP в PicchuEV-x 19,44,45 и RaichuEV-Ras 19,46 были заменены тандемно связанными Turquoise2-GL dC10 и RLuc8 S257G dN3 для образования hyBRET-PicchuX и hyBRET-HRas, соответственно. В качестве контроля мы разработали EKAREV-4464, заменив ECFP Turquoise2-GL dC10 из EKAREVnes. Варианты CFP hyBRET-ERK были получены путем замены Turquoise2-GL dC10 в hyBRET-ERK на mTurquoise2 dC10, Turquoise2 dC10 или ECFP dC10 посредством реакции In-Fusion. HyBRET-ERK с парой mVenus-mTurquoise2 был создан путем замены mVenus dC10 на YPet путем лигирования рестрикционных фрагментов. Варианты hyBRET-ERK NanoLuc также были получены реакцией In-Fusion. CeNL, гибридный белок Turquoise2 и NanoLuc, был описан ранее 22 . Для разработки биосенсоров hyBRET для других киназ Ser / Thr сенсорный домен и соответствующий лигандный домен в hyBRET-ERK были заменены на таковые из AKAR3EV, JNKAR1EV и Eevee-S6K путем лигирования рестрикционных фрагментов, генерируя hyBRET-PKA, JNK и S6K, соответственно. . кДНК, кодирующие биосенсоры или флуоресцентные белки, субклонировали в вектор pCAGGS 47 или вектор pPBbsr, транспозонный вектор PiggyBac с IRES-bsr (ген устойчивости к бластицидину) 48 .Лентивирусный вектор для hyBRET-ERK был сконструирован путем вставки компонентов, кодирующих кДНК hyBRET-ERK, за исключением YPet, в вектор pCSII-EF с IRES-bsr (ген устойчивости к бластицидину) и кодон-оптимизированным YPet для E . coli для подавления рекомбинации между гуманизированным YFP и CFP 49 . Затем остаток треонина субстрата ERK в pCSIIbsr-hyBRET-ERK был заменен на аланин для создания устойчивого к фосфорилированию мутанта hyBRET-ERK-TA путем рестрикционного переваривания и последующего лигирования отожженного дуплекса олиго-ДНК. Чтобы сконструировать векторы для стабильной экспрессии биолюминесцентных белков в клетках млекопитающих, кДНК для RLuc8 S257G dN3 была вставлена ​​в вектор CSII-EF с IRES-puro, и кДНК для голубого нано-фонаря и желтого нано-фонаря были амплифицированы с помощью ПЦР и субклонированы в Вектор pPBbsr путем лигирования рестрикционных фрагментов. pCX4puro-CRY2-cRaf и pCX4neo-CIBN-EGFPx были описаны ранее 50 . Для создания pCX4puro-mCherry-CRY2-cRaf кДНК, кодирующая mCherry, была амплифицирована с помощью ПЦР и слита с CRY2 в pCX4puro-CRY2-cRaf с помощью реакции In-Fusion.Затем cRaf в pCX4puro-mCherry-CRY2-cRaf был заменен линкером и каталитическим доменом мышиного Sos1 (aa 548-1020) или интер-Sh3-доменом p85 человека (aa 428-621), образуя pCX4puro-mCherry-CRY2- Soscat и pCX4puro-mCherry-CRY2-iSh3 соответственно. pT2ADW-hyBRET-ERK был сконструирован следующим образом: инсулятор D4Z4 был вставлен перед промотором CAG pT2AL200R175-CAGGS-EGFP, несущего сайты рекомбинации Tol2 51 . Затем последовательность WPRE pCSII-EF была вставлена ​​перед последовательностью поли А.Наконец, EGFP был заменен кДНК hyBRET-ERK.

Клеточная культура и создание стабильных клеточных линий

Клетки HeLa были приобретены в Human Science Research Resources Bank (Sennanshi, Japan). Клетки HCT116 и клетки 4T1 были получены из АТСС (Американская коллекция типовых культур). Клетки Lenti-X 293T были приобретены у Clontech (Маунтин-Вью, Калифорния). Клетки РС9 были любезным подарком от Масато Окада (Университет Осаки, Япония). Клетки HeLa и Lenti-X 293T поддерживали в среде DMEM (Wako Pure Chemical Industries, Осака, Япония).Клетки HCT116 выращивали в среде McCoy 5A (ThermoFisher Scientific, Waltham, MA). Клетки 4T1 и клетки PC9 культивировали в RPMI1640 (ThermoFisher Scientific). Описанная выше среда для выращивания была дополнена 10% инактивированной нагреванием фетальной бычьей сывороткой (FBS) (Sigma-Aldrich, Сент-Луис, Миссури) и пенициллин / стрептомицин (Nacalai Tesque, Киото, Япония). Все клетки инкубировали во влажной атмосфере с 5% CO2 на воздухе при 37 ° C. Для создания стабильных клеточных линий, экспрессирующих биосенсоры hyBRET с помощью системы транспозонов, клетки котрансфицировали вектором pPB и pCMV-mPBase 48 , полученным из Wellcome Trust Sanger Institute.Через день после трансфекции трансфицированные клетки отбирали 20 мкг / мл бластицидина S (InVivoGen, Сан-Диего, Калифорния), а затем дополнительно культивировали в течение по меньшей мере 1 недели. Для получения лентивируса клетки HEK-293T были котрансфицированы вектором pCSII-EF, psPAX2, который был получен от Addgene (плазмида № 12260) и pCMV-VSV-G-RSV-Rev, любезным подарком от Dr. Миёси (RIKEN BioResource Center, Ибараки, Япония) липофекцией с использованием полиэтиленимина «Макс» с молекулярной массой 40 000 (Polyscience Inc., Уоррингтон, Пенсильвания).Среды, содержащие вирус, собирали через 48 часов после трансфекции, фильтровали и концентрировали с помощью PEG6000. Клетки-мишени инфицировали в присутствии 10 мкг / мл полибрена (Nacalai Tesque). Через два дня после заражения инфицированные клетки отбирали с помощью бластицидина S с концентрацией 20 мкг / мл. Основная масса клеток использовалась в последующих анализах.

Реагенты

Диацетилцелентеразин-h синтезировали, как описано ранее 14 . Целентеразин-h и PD-0325901 были получены от Wako (Осака, Япония).Гефитиниб и AZD6244 были приобретены в компании Symansis (Шанхай, Китай). Анизомицин, dbcAMP и фактор роста эпидермиса были приобретены у Sigma-Aldrich (Сент-Луис, Миссури). Реагент для трансфекции 293fectin был получен от ThermoFisher Scientific и использован для липофекции плазмиды в клетки HeLa. Система анализа люциферазы Nano-Glo была приобретена у Promega (Мэдисон, Висконсин), и субстрат для анализа, включенный в набор, использовали в качестве исходного раствора фуримазина. Люциферины, используемые в каждом люминесцентном анализе, перечислены в таблице S3.

Спектроскопия

Для измерения спектров флуоресценции клетки HeLa, экспрессирующие только CFP, только YFP, или биосенсор помещали на 35-миллиметровую стеклянную чашку. Клетки наблюдали с помощью инвертированного микроскопа (IX81; Olympus, Tokyo), снабженного линзой объектива (масляный объектив UPLAPO 100 × / 1,35NA; Olympus). CFP возбуждались фильтром возбуждения FF02-438 / 24 (Semrock) и дихроичным зеркалом FF458-Di02-25×36 (Semrock). YFP возбуждали возбуждающим фильтром S492 / 18X (Chroma) и стеклянным дихроичным зеркалом (Olympus).Спектры флуоресценции регистрировали с интервалом 2 нм с использованием фотонного многоканального анализатора PMA-12 (Hamamatsu Photonics, Hamamatsu, Japan). Для измерения люминесцентных спектров клетки HeLa, экспрессирующие биосенсор, обрабатывали трипсином и суспендировали в M199 (ThermoFisher Scientific), содержащем 3% FBS и 20 мМ HEPES. К суспензии клеток добавляли 20 мкМ целентеразин-h или 3 мкМ фуримазин для регистрации спектров люминесценции с помощью PMA-12. Полученные спектры флуоресценции и люминесценции были использованы для оценки эффективности передачи энергии биосенсорами.

Оценка эффективности передачи энергии

Для оценки эффективности передачи энергии спектры флуоресценции и биолюминесценции биосенсора hyBRET были подогнаны к теоретическим спектрам излучения, по существу, как сообщалось ранее 20 . Для нелинейной регрессии использовались метод Лербенберга-Марквардта, реализованный в функции nlinfit в MATLAB (MathWorks, Натик, Массачусетс) и функции решателя в Microsoft Excel (Microsoft Corporation, Редмонд, Вашингтон). Теоретические спектры флуоресценции описываются следующим уравнением:

$$ {\ rm {F}} (\ lambda) = {\ varepsilon} _ {c} ({\ lambda} _ {ex}) \ {(1- {E} _ {CY}) \ times {\ varphi} _ {C} \ times {f} _ {C} (\ lambda) + {E} _ {CY} \ times {\ varphi} _ {Y} \ раз {f} _ {Y} (\ lambda) \} + {\ varepsilon} _ {Y} ({\ lambda} _ {ex}) \ times {\ varphi} _ {Y} \ times {f} _ { Y} (\ lambda), $$

(1)

где F ( λ ) — флуоресценция на длине волны λ, ε c ( λ из ) — коэффициент возбуждения CFP на длине волны возбуждения, E CY — КПД FRET между CFP и YFP, ϕ C — квантовая эффективность CFP, f C ( λ ) — нормированное излучение CFP на длине волны λ, ϕ Y — квантовая эффективность YFP, f Y ( λ ) — нормализованное излучение YFP, а ε Y ( λ из ) — коэффициент экстинкции YFP на длине волны возбуждения. Модель ε Y ( λ из ) значение при 440 нм, которое представляет перекрестное возбуждение YFP ​​в режиме FRET, составляет 2,9% от максимального ε Y ( λ из ) значение при 513 нм.

Если предположить, что слияние RLuc8 на С-конце в кадре не изменило физических свойств биосенсоров, теоретические биолюминесцентные спектры описываются следующим уравнением:

$$ \ begin {array} {rcl} { \ rm {B}} (\ lambda) & = & {E} _ {RC} \ times (1- {E} _ {CY}) \ times {\ varphi} _ {C} \ times {f} _ { C} (\ lambda) + ({E} _ {RY} + {E} _ {RC} \ times {E} _ {CY}) \ times {\ varphi} _ {Y} \ times {f} _ { Y} (\ lambda) \\ & & + \, (1- {E} _ {RC} — {E} _ {RY}) \ times {\ varphi} _ {R} \ times {f} _ {R } (\ lambda), \ end {array} $$

(2)

где B ( λ ) — интенсивность биолюминесценции на длине волны λ, E RC — это эффективность BRET между RLuc8 и CFP, E RY — это эффективность BRET между RLuc8 и YFP, ϕ R — квантовая эффективность RLuc8, а f R ( λ ) — нормализованное излучение RLuc8.

E CY был оценен путем нелинейной подгонки измеренных спектров флуоресценции к формуле. 1. E RC Предполагается, что является постоянным независимо от конформации биосенсора, поскольку линкер между RLuc8 и CFP был оптимизирован для максимизации эффективности BRET и стабилизации структуры слитого белка RLuc8-CFP. Следовательно, E RC Nano-lantern используется для биосенсора hyBRET.Квантовая эффективность голубого нано-фонаря, ϕ CNL , выражается следующим уравнением:

$$ {\ varphi} _ {CNL} = {\ varphi} _ {C} \ times {E} _ {RC} + {\ varphi} _ {R} \ times (1- {E} _ {RC}), $$

(3)

Используя данные квантовой эффективности, приведенные в таблице S1, E RC было определено как 0,13. Наконец, E RY был оценен путем подгонки измеренных биолюминесцентных спектров к формуле.2. Значения ε и ϕ перечислены в Таблице S1.

Скорость передачи энергии биосенсоров, содержащих NanoLuc, определяли аналогично биосенсорам, содержащим RLuc8, путем нелинейной подгонки измеренных спектров флуоресценции к уравнению. 4.

$$ \ begin {array} {rcl} {\ rm {B}} (\ lambda) & = & {E} _ {NC} \ times (1- {E} _ {CY}) \ times {\ varphi} _ {C} \ times {f} _ {C} (\ lambda) + ({E} _ {NY} + {E} _ {NC} \ times {E} _ {CY}) \ times {\ varphi} _ {Y} \ times {f} _ {Y} (\ lambda) \\ & & + \, (1- {E} _ {NC} — {E} _ {NY}) \ times { \ varphi} _ {N} \ times {f} _ {N} (\ lambda), \ end {array} $$

(4)

где B ( λ ) — интенсивность биолюминесценции на длине волны λ, E NC — это эффективность BRET между NanoLuc и CFP, E NY — это эффективность BRET между NanoLuc и YFP, ϕ N — квантовая эффективность NanoLuc, а f N ( λ ) — нормализованное излучение NanoLuc.Обратите внимание, что эффективность BRET между NanoLuc и CFP, E NC , был также оценен по формуле. 4, установка E NY и E CY как ноль.

Покадровая визуализация культивируемых клеток

Покадровая съемка была получена и обработана с использованием, по существу, тех же условий и процедур, что и ранее. 52 .Вкратце, клетки HeLa, экспрессирующие биосенсоры hyBRET, голодали в течение 3-8 часов с помощью FluoroBrite DMEM (Thermo Fischer Scientific, Уолтем, Массачусетс) с добавлением 0,1% бычьего сывороточного альбумина (БСА), 1 мМ пирувата натрия (Thermo Fischer Scientific), GlutaMax и пенициллина. /стрептомицин. При необходимости голодные клетки обрабатывали стимулом во время покадровой визуализации. Клетки получали с помощью инвертированного микроскопа (IX83; Olympus, Токио), оснащенного линзой объектива (масляный объектив UPlanSApo 60 × / 1,35NA; Olympus), системой освещения (световой двигатель Spectra-X; Lumencore, Бивертон, Орегон), Лазерная система автофокусировки IX3-ZDC2 (Olympus), автоматически программируемый XY-столик MD-XY30100T-Meta (SIGMA KOKI, Токио) и инкубатор INUG2F-IX3W (Tokai Hit, Фудзиномия, Япония).В каждом эксперименте использовалась одна из следующих камер: CCD с охлаждением MD-695 (Molecular Devices, Саннивейл, Калифорния), EMCCD с охлаждением iXon Ultra 888 (ANDOR, Белфаст, Великобритания) и EMCCD с охлаждением Rolera Thunder (QImaging, Surey, BC) . Для визуализации FRET клетки подвергали воздействию света 440 нм с интенсивностью света 25 мкВт / см 2 в течение 30–200 мс, и получали изображения FRET и CFP. Для визуализации BRET в чашку для культивирования добавляли 20 мкМ коэлентеразин-h или 3 мкМ фуримазин (Promega) перед началом визуализации.Голубое свечение и желтое свечение клеток регистрировали при времени экспозиции от 6 до 30 с, в зависимости от камеры, используемой в каждом эксперименте. Чтобы уменьшить рассеянный свет от микроскопа и окружающей среды во время визуализации BRET, в IX83 был включен режим аппаратного затемнения, верх нагревателя предметного столика был покрыт алюминиевой фольгой, и эксперименты проводились в темной комнате. Дихроичные зеркала и фильтры, использованные в этой работе, представляли собой дихроичное зеркало FF458-Di02-25×36 для CFP и FRET, три эмиссионных фильтра (FF01-483 / 32-25 для CFP и голубой люминесценции, FF01-542 / 27-25 для FRET, YFP и желтое свечение и FF01-624 / 40-25 для mCherry) от Semrock (Рочестер, Нью-Йорк) и стеклянный отражатель U-MREF, используемый в качестве дихроичного зеркала для YFP и mCherry от Olympus.Для получения изображений BRET не использовалось дихроичное зеркало.

Обработка изображений

Программное обеспечение Metamorph (Molecular Devices) и программное обеспечение Safir (Roper Scientific France, Lisses, Франция) использовались для уменьшения шума и анализа изображений. После вычитания фона изображения отношения FRET / CFP были созданы и представлены в режиме отображения с модуляцией интенсивности (IMD). В режиме IMD восемь цветов от красного до синего используются для представления отношения FRET / CFP, причем интенсивность каждого цвета указывает среднюю интенсивность каналов FRET и CFP.Для люминесцентных изображений вычитанию фона предшествовало удаление космических лучей и уменьшение шума 53 . Затем были созданы изображения с соотношением желтого / голубого люминесценции таким же образом, как и изображения с соотношением FRET / CFP. Двухволновые изображения, полученные при люминесцентном изображении всего тела, были разделены между желтым и голубым люминесцентными изображениями после удаления шума и вычитания фона. На рис. S7 сигналы от голубого нано-фонаря и желтого нано-фонаря были разделены линейным разделением.

Optogenetics

Клетки HeLa трансфицировали вектором экспрессии для биосенсора hyBRET, pCX4neo-CIBN-EGFP-x и вектором экспрессии для слитого белка CRY2.Через день после трансфекции клетки голодали с помощью FluoroBrite DMEM с добавлением 0,1% бычьего сывороточного альбумина (БСА), 1 мМ пирувата натрия и GlutaMAX в течение 3-8 часов. Перед началом визуализации в чашку для культивирования добавляли 20 мкМ коэлентеразин-ч. Канал mCherry использовался для определения фокуса и положения стадии, чтобы не запускать мембранную транслокацию слитых с CRY2 сигнальных молекул. Визуализацию BRET выполняли, как описано выше. В момент времени 0 клетки освещали светом 490 нм (55 мкВт / см 2 ) в течение 100 мс.Чтобы оценить влияние освещения синим светом на соотношение BRET сенсоров hyBRET и интенсивность люминесценции RLuc8, клетки трансфицировали pCAGGS-hyBRET-ERK или pCSIIpuro-RLuc8. На следующий день клетки голодали и получали люминесцентное изображение, как описано выше. Во время визуализации клетки освещали светом 440 нм (200 или 450 мкВт / см 2 ) или светом 490 нм (180 мкВт / см 2 ) в течение 5 с в заранее определенные моменты времени. Плотность света измеряли измерителем оптической мощности TQ8230 (Advantest).

Анализы на микропланшетном ридере

Клетки, экспрессирующие hyBRET-ERK, высевали на 96-луночные белые планшеты при плотности клеток 3000 клеток / лунку. На следующий день клетки обрабатывали серийно разведенным AZD6244, ингибитором MEK, в течение 20 минут. Цифровой диспенсер HP D300 (Tecan, Männedorf, Швейцария) использовался для разбавления лекарственного средства и добавления в лунку. После обработки лекарственным средством в каждую лунку добавляли среду, содержащую 1 мкМ коелентеразин-h с серийно разбавленным ингибитором, и измеряли желтое и голубое свечение с помощью считывающего устройства для микропланшетов GloMax Discover (Promega).Короткопроходной фильтр 495 нм использовали для голубой люминесценции, а фильтр длиной 530 нм использовали для желтой люминесценции. В мультиплексном анализе, показанном на рис. 4c – f, среду заменяли 250 мкл FluoroBriteDMEM с добавлением 10% FBS, 1 мМ пирувата натрия, GlutaMAX и пенициллина / стрептомицина после прикрепления клеток ко дну лунки. Через несколько часов после смены среды клетки обрабатывали серийно разведенным гефитинибом в течение 1 дня. Голубое свечение и желтое свечение клеток hyBRET-ERK, обработанных лекарственным средством, измеряли в присутствии 1 мкМ целентеразина-h.{\ prime} = 1- \ frac {3 (S {D} _ {AZD0} + S {D} _ {AZD1})} {Av {e} _ {AZD0} -Av {e} _ {AZD1}} $$

(5)

Здесь SD — это стандартное отклонение, а Ave — это среднее значение желтой / голубой люминесценции из 3 лунок, обработанных без AZD6244 (AZD0) или 1 мкМ AZD6244 (AZD1). На рис. 4f теоретические функции, описанные ниже, использовались в качестве модельных функций для соответствия экспериментальным данным, как сообщалось ранее 26 . Уравнения представляют взаимосвязь между активностью ERK и количеством живых клеток.{\ frac {1} {n {H} _ {ERK}}} $$

(7)

Здесь min — минимум, amp — амплитуда, IC50 — это половина максимальной ингибирующей концентрации, а nH — коэффициент Хилла количества живых клеток (L) или активности ERK (ERK). ERK — это соотношение желтого / голубого люминесценции hyBRET-ERK. Поскольку минимумы и амплитуды были однозначно определены из экспериментальных данных, IC50s и nHs были подобраны как свободные параметры.

Образование опухоли ксенотрансплантата и генерация трансгенных мышей

Самок мышей BALB / c nu / nu в возрасте 7–9 недель (Japan SLC, Hamamatsu, Japan) использовали для образования опухоли ксенотрансплантата.1 × 10 6 клеток HeLa, стабильно экспрессирующих желтый нано-фонарь и голубой нано-фонарь в 50 мкл GelTrex / PBS (1: 1) (ThermoFisher Scientific), вводили подкожно в левый и правый бок мышей. Мышей визуализировали через две недели после трансплантации. Для исследования метастазов опухоли мышам внутривенно вводили 1 × 10 5 клеток опухоли молочной железы мыши 4T1, стабильно экспрессирующих hyBRET-ERK или hyBRET-ERK-TA в PBS в хвостовой вене, и анализировали через 2–3 недели после инъекции опухоли 4T1. .Трансгенные мыши были получены с помощью Tol2-опосредованного переноса гена 54 . Вкратце, оплодотворенные яйца, полученные от мышей Jcl: B6C3F1 (B57BL / 6N Jcl X C3H / HeN Jcl), микроинъектировали смесью мРНК Tol2 и pT2ADW-hyBRET-ERK. Животных-основателей скрещивали с мышами Jcl: ICR для получения стабильных линий. Новорожденных мышей освещали синим фонариком LEDGFP-3W (Optocode, Tokyo) и проверяли на зеленую или красную флуоресценцию через желтые очки. Протоколы для животных были рассмотрены и одобрены Комитетом по уходу за животными и их использованию Высшей школы медицины Киотского университета (No.10584, 14079, 15064, 16038 и 17539), и методы были выполнены в соответствии с соответствующими директивами и правилами.

Биолюминесцентная визуализация всего тела животных

Для сравнения продолжительности жизни биолюминесценции между аналогами целентеразина-h in vivo (рис. S7) мышей с подкожными опухолями анестезировали изофлураном (1,5% ингаляции, 0,5 л / мин) и внутривенно вводили коэлентеразин-h (80 мкг на мышь) в этаноле / PBS (1: 4) или диацетил-коэлентеразин-h (80 мкг на мышь) / Pluronic F-127 (20% мас. / об. в DMSO) (Biotium, Hayward , CA) (1: 1) растворяли в PBS.Для получения люминесцентных изображений мышей с метастазированными опухолями (рис. 5a – j и S8) мышей анестезировали изофлураном (1,5% ингаляции, 0,5 л / мин) и внутривенно вводили смесь диацетил-целентеразина-h (200 мкг на мышь. ) и носитель или 5,0 мг / кг PD-0325901 в Pluronic F-127 (20% мас. / об. в ДМСО) / PBS (1: 1) (общий объем составлял 100 мкл / мышь). Для визуализации трансгенных мышей, экспрессирующих hyBRET-ERK (рис. 5k), трансгенных мышей анестезировали изофлураном (1,5% ингаляции, 0.5 л / мин) и вводили 1 мМ диацетил целентеразин-h, растворенный в PBS, содержащем 1% Pluronic F-127 (20% мас. / Об. В ДМСО), путем непрерывной внутривенной инфузии со скоростью 90 мкл / час с помощью шприцевого насоса Model 11 plus (Harvard Аппарат, Холлистон, Массачусетс). Носитель или 5,0 мг / кг PD-0325901 (общий объем составлял 100 мкл / мышь) вводили внутрибрюшинно во время визуализации. Изображение мышей получали с помощью имидж-сканера MIIS (Molecular Devices), оснащенного камерой iXon Ultra 888 EMCCD (ANDOR), оптикой разделения изображений W-VIEW GEMINI (Hamamatsu Photonics), системой светодиодного освещения XT640-W (Lumen Dynamics, Missisauga, ON ) и монофокальный телецентрический объектив TEC-55 (Computar, Cary, NC), управляемый программой Metamorph (Molecular Devices).Во время люминесцентной визуализации мышей держали под анестезией изофлураном и держали в тепле с помощью пластины предварительного нагрева Chamlide (Live Cell Instrument, Сеул, Корея). Желтое свечение и голубое свечение опухолей регистрировали при следующих условиях: время воздействия 30 с (для подкожных опухолей) или 4 мин (для метастазированных опухолей), усиление ЭМ 1000 (максимум) и биннинг ПЗС 1. Дихроичное зеркало и Эмиссионные фильтры, установленные в W-VIEW GEMINI для двухцветного люминесцентного изображения in vivo , представляли собой дихроичное зеркало FF509-Di01-25×36 и два эмиссионных фильтра (FF01-483 / 32-25 для голубой люминесценции и FF01-542 / 27- 25 для желтого свечения) и были получены от Semrock.

Прижизненная FRET-визуализация легкого мыши

Мышей с метастатической опухолью 4T1 анестезировали изофлураном (1% ингаляция, 0,5 л / мин). Часть кожи на левой груди была разрезана, чтобы обнажить поверхностный мышечный слой и ребра. Горло мышей разрезали по средней линии глотки, чтобы обнажить трахеальную трубку, и в трахеальную трубку вставляли ангиокатетер SURFLO 22-G (Terumo, Tokyo). Затем мышей помещали в положение для правого бокового пролежня и резецировали левые ребра, чтобы обнажить левое легкое.Мышей немедленно подключали к механическому вентилятору MK-V100 (Muromachi Kikai, Tokyo). До конца визуализации дыхание обеспечивалось механически при следующих условиях: 55 ударов в минуту, 35 мл / мин, соотношение вдох / выдох 3: 2, изофлуран 1,5%. Чтобы уменьшить артефакты движения, вызванные дыханием, обнаженную область левого легкого осторожно отсосали и зафиксировали на покровном стекле с помощью изготовленного на заказ стабилизатора органа, который был подключен к вакуумному насосу. Опухоли в легких получали с помощью вертикального микроскопа FV1200MPE-BX61WI (Olympus), оснащенного водно-иммерсионным объективом XLPlanN 25x (Olympus), лазером InSight DeepSee (Spectra-Physics, Санта-Клара, Калифорния) и FV1200MPE Reflected Четырехканальный внешний детектор GaAsP NDD (Olympus).CFP возбуждали лазером с длиной волны 840 нм. В качестве дихроичных зеркал использовали DM450, DM570 и DM505 (Olympus). Используемые фильтры выбросов: FF01-425 / 30 (Semrock), BA460–500 (Olympus) и BA520–560 (Olympus) для SHG, CFP и FRET, соответственно. Во время визуализации FRET мышам внутривенно вводили 5,0 мг / кг -1 PD-0325901 без прерывания визуализации.

Новый анализ пептида FRET выявляет эффективное ингибирование HtrA Helicobacter pylori посредством связывания цинка и меди

Новый анализ пептида FRET для определения активности

H.pylori HtrA

До сих пор активность H. pylori HtrA (HpHtrA) в основном исследовалась с помощью казеиновой зимографии или вестерн-блоттинга фрагментов субстрата, которые являются трудоемкими, медленными и низкопроизводительными методами 28,34 . Технология FRET представляет собой новейшую методологию и позволяет проводить непрерывные анализы активности протеаз и высокопроизводительный скрининг ингибиторов протеаз. Для разработки анализа пептида FRET, содержащего оптимизированный сайт короткого расщепления для HtrA, мы выполнили глобальное профилирование специфичности для HtrA с использованием прямого анализа профилей протеазной специфичности в геле (DIPPS) 35 .Анализируя HtrA-нацеленные протеомные пептиды, полученные из клеток MKN-28, мы обнаружили 2479 пептидов, которые были обработаны HtrA. Эти пептиды обычно расщеплялись после алифатических аминокислотных остатков V, I и A в положении P1, в то время как предпочтение отдается основным аминокислотным остаткам, таким как R и K, в положении P2. Специфичность других участков связывания, не являющихся первичными, была менее выраженной, при этом R показывает наибольшее обогащение в положении P3, а A — в положении P4. Было показано, что среди первичных сайтов аминокислоты A и K обогащены в положении P1 ‘и Y в положении P2’ (рис.1A, левая панель, фиг. S1). Обнаруженный характеристический профиль специфичности AR / QRV ↓ AY хорошо соответствует сигнатурному сайту [VITA] ↓ [VITA] -xxD- [DN], ранее идентифицированному в субстрате HtrA E-кадгерине, и подтверждает предпочтение HpHtrA расщеплять между гидрофобными аминокислотами. 11 . Интересно, что последовательность AR / QRV ↓ AY напоминает линкерную область AQPVEA между EC5 и TMD E-кадгерина, которая уже была предложена в качестве предпочтительного сайта расщепления в E-кадгерине для HpHtrA во время процесса инфицирования 11,12 , но еще не подтверждено экспериментально (рис.1А, правая панель). На основе этого уточненного паттерна сайта расщепления был получен пептид FRET, состоящий из оптимизированной последовательности AQRVAF, N-концевого флуорофора 2-аминобензоила (2-Abz) и C-концевого гасителя 3-нитротирозина Y (NO 2 ). синтезированы (рис. S2). Он одинаково хорошо расщеплялся трипсином и HpHtrA с R и V, соответственно, в положении P1 (фиг. 1B и фиг. S3 и S4). Тушение внутримолекулярной флуоресценции пептида FRET было высокоэффективным (рис. S3), а расщепление с использованием трипсина и HtrA дикого типа (wt) выявило сильное усиление испускаемой флуоресценции, тогда как неактивный мутант HtrA (SA) не влиял на субстрат FRET ( Инжир.1С). Масс-спектрометрический анализ продемонстрировал HtrA-специфическое расщепление с V в положении P1 (рис. S4). Кинетика протеолитической активности увеличения концентраций HpHtrA wt продемонстрировала эффективное расщепление пептида FRET уже при низких концентрациях по сравнению с неактивным мутантом HtrA SA (фиг. 1D).

Рисунок 1

Новый анализ пептида FRET для обнаружения активности HtrA H. pylori . ( A ) Профиль специфичности расщепления HpHtrA, полученный при профилировании DIPPS, представлен как iceLogo со значительно обогащенными и недостаточно представленными аминокислотами выше и ниже оси x соответственно.Раздвижная пептидная связь между P1 и P1 ‘показана серой пунктирной линией на iceLogo. Модель справа представляет доменную структуру человеческого E-кадгерина (hCdh2), которая состоит из внеклеточного домена (EC1 – EC5), трансмембранного домена (TMD) и внутриклеточного домена (IC). Сайты расщепления HtrA были идентифицированы (красные стрелки) в сайтах связывания Ca ++ , расположенных между отдельными областями EC. Согласно iceLogo, дополнительный сайт расщепления для HtrA присутствует в линкерной области между доменом EC5 и TMD.( B ) Последовательность AQRVAF, содержащая 2-аминобензоил (2-Abz) в качестве флуорофора и 3-нитротирозин Y (NO 2 ) в качестве гасителя, гидролизуется трипсином с аргинином (R) в положении P1 и HpHtrA. с валином (V) в позиции P1. ( C ) 5 мкМ пептида FRET инкубировали с 250 нМ HpHtrA дикого типа (wt), его изогенно неактивным мутантом (SA) или 125 нМ трипсином в течение 180 мин в 50 мМ буфере HEPES (pH 7,4) при 37 ° C. ° C. Данные представляют собой относительные флуоресцентные единицы (RFU) ± S.D. с флуоресцентным сигналом, полученным от обработанного трипсином пептида FRET, установленного за 100%. Звездочки указывают на статистически значимые различия (**** p <0,0001). ( D ) 4 мкМ пептида FRET инкубировали с указанными концентрациями HpHtrA wt или SA в течение 180 мин при 37 ° C в 50 мМ буфере HEPES (pH 7,4). Данные представляют собой RFU ± S.D. с флуоресцентными сигналами, полученными от пептида FRET, обработанного 400 нМ HpHtrA wt в течение 180 мин, установленным как 100%.

Двухвалентные катионы Zn

++ и Cu ++ блокируют HpHtrA-опосредованное расщепление E-кадгерина

Пептидный анализ FRET является подходящим подходом для скрининга лекарств для выявления и оптимизации ингибиторов HpHtrA.Zn ++ может ингибировать широкий спектр неметаллопротеаз, включая трипсин, калликреин и тромбин 33,36,37 . Следуя нашим наблюдениям, что ионы кальция эффективно предотвращают отшелушивание эктодомена E-кадгерина, покрывая HpHtrA-целевые сайты сигнатуры в субстрате 11,12 , мы провели подробное исследование влияния двухвалентных ионов на активность HtrA H. pylori и расщепление субстрата. В первом подходе рекомбинантный HpHtrA инкубировали с казеином, состоящим из α S1 -, α S2 — и β-казеина в качестве субстрата, и анализировали расщепление в белковых гелях, окрашенных Кумасси (рис.2А). HpHtrA эффективно расщепляет β-, α S1 — и, в меньшей степени, α S2 -казеин (рис. 2A, дорожка 3). Среди протестированных ионов металлов Zn ++ и Cu ++ сильно ингибировали активность HtrA, что указывает на прямое влияние этих двухвалентных катионов на протеолитическую активность HpHtrA (фиг. 2A, дорожки 7 и 9). Хелатирующие агенты EDTA и EGTA добавляли в качестве контролей, и они не влияли на HtrA-опосредованную деградацию казеина (фиг. 2A, дорожки 12 и 13). Эти данные предполагают, что двухвалентные переходные металлы могут по-разному влиять на активность HpHtrA.Расщепление казеина под действием HtrA, экспрессируемого Borrelia burgdorferi (BbHtrA), аналогичным образом ингибируется Zn ++ и Cu ++ , а также наблюдали для DegP из E. coli и HtrA1 человека 38 . Интересно, что кристаллическая структура гомолога HtrA A (HhoA) из фотосинтетической цианобактерии Synechocystis sp. PCC 6,803 показал, что гексамерная структура содержит ион Zn ++ в центральном канале, который инактивирует HhoA в анализе расщепления казеина 39 .Эти данные подтверждают наши выводы о том, что HpHtrA можно ингибировать путем прямого связывания Zn ++ и Cu ++ .

Рисунок 2

Двухвалентные катионы модулируют активность HpHtrA. ( A ) 10 мкг казеина, состоящего из α S1 -, α S2 — и β-казеина, инкубировали с 250 нг HpHtrA в течение 16 ч при 37 ° C в 50 мМ буфере HEPES (pH 7,4). Где указано, добавляли 1 мМ различных двухвалентных ионов, EDTA или EGTA. Белки разделяли с помощью SDS-PAGE и окрашивали кумасси бриллиантовым синим G250.( B ) 50 нг hCdh2 инкубировали с 250 нг HpHtrA в течение 16 ч при 37 ° C в 50 мМ буфере HEPES (pH 7,4). Где указано, добавляли 1 мМ различных двухвалентных ионов, EDTA или EGTA. Полноразмерный hCdh2 (Cdh2 FL , 125 кДа) и фрагменты расщепления hCdh2 детектировали вестерн-блоттингом с использованием антитела, распознающего домен EC5 hCdh2. HpHtrA и автоматически обработанный HpHtrA (HpHtrAs) детектировали с использованием поликлонального антитела к HpHtrA.

Чтобы определить, вызвано ли это ингибирование прямым воздействием на протеазу HtrA или вмешательством в субстрат казеина HtrA, мы дополнительно проанализировали влияние ионов металлов на HtrA-опосредованное расщепление E-кадгерина.Рекомбинантный человеческий E-кадгерин (hCdh2) инкубировали с рекомбинантным HpHtrA в течение 16 часов в присутствии различных двухвалентных катионов, как указано. Фрагменты hCdh2 были обнаружены с помощью вестерн-блоттинга с использованием антитела, распознающего домен EC5 E-кадгерина. На эффективное HpHtrA-опосредованное расщепление hCdh2 указывало наличие характерного HtrA-индуцированного паттерна фрагментации 11 (фиг. 2B, дорожка 3). Добавление Ca ++ значительно блокировало расщепление hCdh2, в то время как хелатирующие агенты EDTA и EGTA значительно усиливали фрагментацию hCdh2 по сравнению с одним только HpHtrA wt, как сообщалось ранее 12 (рис.2B, дорожки 4, 12 и 13). Резкий ингибирующий эффект наблюдался после добавления Zn ++ и Cu ++ , поскольку HpHtrA-опосредованная фрагментация hCdh2 была сильно снижена (фиг. 2B, дорожки 7 и 9). Это согласуется с экспериментами по расщеплению in vitro с использованием казеина в качестве субстрата (рис. 2А). Эти данные предполагают, что Zn ++ и Cu ++ мешают активности HpHtrA, а не связываются с субстратом. Это явно контрастирует с Ca ++ , который связывается с мотивами связывания Ca ++ , расположенными между отдельными доменами EC.Связывание Ca ++ необходимо для функциональных межмолекулярных взаимодействий в цис и транс между внеклеточными доменами E-кадгерина на соседних эпителиальных клетках. В частности, эти связывающие Ca ++ мотивы были ранее идентифицированы как сайты расщепления для HtrA. Следовательно, связывание Ca ++ маскирует мотивы и предотвращает дальнейшую фрагментацию растворимого внеклеточного домена 90 кДа E-кадгерина при инфицировании H. pylori 11,12 .

Для дальнейшего уточнения ингибирующего действия Zn ++ и Cu ++ , мы провели эксперименты по титрованию, чтобы определить концентрации Zn ++ и Cu ++ , которые необходимы для ингибирования HtrA, используя анализ пептида FRET (фиг. 3A). Важно отметить, что добавление только Zn ++ и Cu ++ не гасило флуоресцентный сигнал (фиг. S5), подтверждая специфичность измерения и предполагаемое широкое применение пептида FRET для будущего скрининга лекарств.Относительная флуоресценция через 15 и 180 минут продемонстрировала, что возрастающие концентрации Zn ++ и Cu ++ значительно снижают активность HtrA (фиг. 3A). Значения половины максимальной ингибирующей концентрации (IC 50 ), рассчитанные для Zn ++ , составили 649,5 нМ (95% доверительный интервал 560–746,1 нМ) через 15 минут и 2,57 мкМ (95% доверительный интервал 2,382–2,774 мкМ) через 180 минут. мин. Cu ++ показал IC 50 295,4 нМ (95% доверительный интервал 255.8–342,7 нМ) через 15 мин и 937,5 нМ (95% доверительный интервал 890,9–980,4 нМ) через 180 мин, что указывает на эффективную инактивацию HpHtrA. Ингибирование HpHtrA wt, обнаруженное в анализе пептида FRET, также сравнивали с экспериментами по расщеплению in vitro с использованием hCdh2 или казеина в качестве субстратов. В качестве контроля мы включили протеолитически неактивный мутант HpHtrA (SA) 4,40 , который не обрабатывает hCdh2 или казеин. Zn ++ явно ингибировал HpHtrA-опосредованную фрагментацию hCdh2 в концентрации 50 мкМ (рис.3B, дорожка 4) и более высокие концентрации Zn ++ блокировали расщепление hCdh2 еще более эффективно (рис. 3B, дорожки 5-8). В отличие от расщепления hCdh2, на казеинолитическую активность HpHtrA не влияли низкие концентрации Zn ++ или Cu ++ (рис. 3C), что позволяет предположить, что казеин может поглощать Zn ++ и Cu ++ в виде ранее сообщалось 41 и, следовательно, мешает активности расщепления. Небольшой ингибирующий эффект можно было обнаружить при использовании 250 мкМ Zn ++ или Cu ++ , который усиливался при увеличении концентраций (рис.3С, дорожки 6–8). Для полного ингибирования расщепления казеина требовалось увеличение до 500–1000 мкМ (рис. 3C, дорожки 7–8). Различные концентрации, необходимые для эффективного ингибирования HpHtrA, обнаруженного в анализе пептида FRET и в эксперименте по расщеплению in vitro, могут быть связаны с повышенной доступностью пептида FRET, который содержит единственный консенсусный сайт расщепления, не зависящий от конформации, а не сложенные комплексные белки. Таким образом, мы пришли к выводу, что использование пептида FRET в качестве субстрата для HpHtrA является высокочувствительным и надежным подходом для количественной оценки активности HtrA.

Рисунок 3

ZnCl 2 и CuCl 2 ингибируют активность HpHtrA в зависимости от концентрации. ( A ) 5 мкМ пептида FRET инкубировали с 250 нМ HpHtrA и возрастающими концентрациями ZnCl 2 (левая панель) или CuCl 2 (правая панель) в течение 15 минут (черные столбцы) и 180 минут (серые столбцы). при 37 ° C в 50 мМ буфере HEPES (pH 7,4). Данные представляют собой относительные единицы флуоресценции (RFU) ± S.D. с флуоресцентными сигналами, полученными от пептида FRET, обработанного HpHtrA wt, установленным за 100%.Звездочки указывают на статистически значимые различия (**** p <0,0001; нс, недостоверно). ( B ) 50 нг hCdh2 инкубировали с 250 нг HpHtrA wt или неактивным мутантом (SA) и увеличивающимися концентрациями ZnCl 2 (левая панель) или CuCl 2 (правая панель) в течение 16 часов при 37 ° C в 50 мМ буфер HEPES (pH 7,4). Полноразмерный hCdh2 (Cdh2 FL ) и фрагменты расщепления были обнаружены с помощью вестерн-блоттинга с использованием антитела, распознающего домен EC5 hCdh2.HpHtrA и автоматически обработанный короткий HpHtrA (HpHtrAs) детектировали с использованием поликлональных антител. ( C ) 10 мкг казеина, состоящего из α S1 -, α S2 — и β-казеина, инкубировали с 250 нг HpHtrA wt или неактивным мутантом (SA) и с возрастающими концентрациями ZnCl 2 (левая панель ) или CuCl 2 (правая панель). После инкубации при 37 ° C в течение 16 ч белки были разделены с помощью SDS-PAGE и визуализированы путем окрашивания кумасси бриллиантовым синим G250.

Значения IC 50 ингибирования Zn ++ и Cu ++ не находятся в пределах физиологических концентраций (концентрации в свободной плазме составляют ~ 10 -9 моль / л для Zn ++ и ~ 1.6 × 10 −11 моль / л для Cu ++ ) 42 . Однако в комбинации с ингибиторами сериновой протеазы цинк, как сообщается, является мощным усилителем умеренных низкомолекулярных ингибиторов 33,37,43 . Несмотря на то, что не все сериновые протеазы содержат типичные сайты связывания Zn ++ , которые характеризуются двумя остатками гистидина с их имидазольными боковыми цепями в качестве лигандов для Zn ++ , было высказано предположение, что Zn ++ и Cu ++ связывается в активных карманах тромбина 33 , трипсина 33 и калликреина 36 и связывает ингибитор с активным центром, что приводит к эффективному ингибированию.Эти исследования продемонстрировали, что более низкие концентрации как ингибитора, так и Zn ++ были достаточны для сильного усиления ингибирующих эффектов. Поскольку мы обнаружили, что Zn ++ блокирует активность HpHtrA, возникает соблазн предположить, что умеренные ингибиторы HtrA в сочетании с низкой концентрацией ионов Zn ++ могут синергетически действовать как высокоэффективные цинк-опосредованные ингибиторы сериновой протеазы.

Zn

++ и Cu ++ по-разному взаимодействуют с HpHtrA

Для активации E.coli , гомолог HtrA DegP, который превращается в протеолитически активные олигомеры при связывании субстрата 44 . Протеазы HtrA несут несколько доменов, которые критически важны для сборки и активности. Протеазы DegP / HtrA содержат сигнальный пептид (SP), расположенный на N-конце, за которым следует протеазный домен, который характеризуется каталитической триадой гистидина (H), аспарагиновой кислоты (D) и серина (S). Расположенные на С-конце домены PDZ1 и PDZ2 важны для распознавания субстрата и олигомеризации 44 .Несколько регуляторных петель (например, LA, LD и петли L1 – L3) были исследованы для E. coli DegP, которые имеют сходство последовательностей с HpHtrA (рис. 4A, рис. S6A и рис. S6B). «Сиротский» аллостерический карман (I 161 –S 169 ), расположенный между доменом PDZ1 и доменом сериновой протеазы, был идентифицирован в рентгеновской структуре 2,6 Å HpHtrA, которая функционирует как важный межбелковый интерфейс ( Рис. 4B и Рис. S6B) 45,46 . Этот аллостерический карман содержит аминокислотный мотив S 164 , D 165 , S 166 и D 168 , который необходим не только для стабильности и активности олигомеров HtrA 45 , но и для связывания низкомолекулярные ингибиторы, которые блокируют активность HtrA 46 .Хотя типичные связывающие Zn ++ — или Cu ++ мотивы, характеризующиеся богатыми гистидином участками, не присутствуют в этой области, HpHtrA и, в частности, аллостерическая петля могут содержать дополнительные Zn ++ — и Cu ++ -сайты связывания, состоящие из аспарагиновой кислоты (D), глутаминовой кислоты (E) или цистеина (C), которые могут одинаково хорошо связывать Zn ++ или Cu ++ 47 . Поэтому мы хотели исследовать, могут ли Zn ++ и Cu ++ нацеливаться на аспарагиновые кислоты, экспонируемые в этой петле, которые ранее предполагались как лиганд-связывающие мотивы 47,48 .Отдельные аминокислоты S 164 , D 165 , S 166 и D 168 были мутированы на аланин и проанализированы на стабильность олигомера (фиг. 4C). В то время как HpHtrA S 164 A показал повышение стабильности олигомера при зимографии казеина и SDS-PAGE в невосстанавливающих условиях, олигомерные HpHtrA D 165 A, HpHtrA S 166 A и HpHtrA D 168 A были полностью распались (Рис. 4C, левая и средняя панель), подтверждая, что эта петля играет важную роль в аллостерической регуляции HpHtrA.Протеолитически неактивный HpHtrA S 221 A был включен в качестве отрицательного контроля, и чистота рекомбинантных белков HpHtrA была продемонстрирована в SDS-PAGE в денатурирующих условиях (фиг. 4C, правая панель). Основываясь на этих данных, мы предполагаем, что D 165 , S 166 и D 168 в HpHtrA не требуются для протеолитической активности, а скорее для стабилизации активной конформации. Затем протеолитическую активность мутантов HpHtrA анализировали в экспериментах по расщеплению in vitro.Несмотря на то, что стабильность всех трех олигомеров HpHtrA была явно снижена, казеин (фиг. 5A) и гидролиз E-кадгерина (фиг. 5B) изменились лишь незначительно по сравнению с HpHtrA wt. Мы предполагаем, что ограниченная активность HtrA достаточна для расщепления субстратов в течение 16 часов инкубации. Кроме того, кинетику гидролиза субстрата мутантами HtrA исследовали с использованием пептидного анализа FRET. Количественная оценка показала, что мутация S 164 или S 166 привела к снижению протеолитической активности примерно на 30%.Мутация D 165 или D 168 вызывала еще большую потерю активности HpHtrA (фиг. 5C), предполагая, что мутации в петле серьезно влияют на стабильность, образование олигомеров и / или активность. Это наблюдение согласуется с нашими предыдущими данными, подчеркивая важность этой аллостерической области. Биоактивный лиганд, который был разработан для связывания с аллостерическим карманом, эффективно блокировал активность HtrA H. pylori и Campylobacter jejuni и, следовательно, трансмиграцию бактерий через эпителиальный барьер 46 .

Рисунок 4

Петля, связывающая аллостерический лиганд, важна для стабилизации олигомера HtrA. ( A ) Модель HtrA, демонстрирующая структуру домена, показывающую сигнальный пептид (SP), расширенную линкерную область, содержащую петлю LA, домен протеазы с каталитической триадой гистидина (H), аспарагиновой кислоты (D) и серина ( S), а также домены PDZ1 и PDZ2. Домен протеазы также содержит регуляторные петли LD, L1, L2 и L3. Положение лиганд-связывающей петли выделено красным.( B ) Рентгеновская структура протеазного домена HpHtrA 46 с S 164 , D 165 , S 166 и D 168 , указанными в лиганд-связывающей петле. S 221 в активном центре выделен пурпурным цветом. ( C ) Олигомеризация и активность HpHtrA wt, HpHtrA S 164 A, HpHtrA D 165 A, HpHtrA S 166 A, HpHtrA D 168 A и HpHtrA S 22, проанализированных на примере1 зимография (дорожки 1–6), невосстанавливающий SDS-PAGE (дорожки 7–12) и восстанавливающий SDS-PAGE (дорожки 13–18).

Рисунок 5

Протеолитическая активность мутантов петли HpHtrA. Для анализа протеолитической активности HtrA wt и его изогенных мутантов HpHtrA S 164 A, HpHtrA D 165 A, HpHtrA S 166 A, HpHtrA D 168 A и неактивных HpHtrA S 221 10 мкг казеина ( A ) или 50 нг E-кадгерина (hCdh2) ( B ) инкубировали с 250 нг вариантов HtrA, как указано, в течение 16 ч при 37 ° C в 50 мМ буфере HEPES (pH 7,4). Расщепление казеина анализировали с помощью окрашенного кумасси SDS-PAGE, а расщепление hCdh2 определяли с помощью вестерн-блоттинга с использованием антитела, распознающего домен EC5 hCdh2.HpHtrA и автоматически обработанные HpHtrA были обнаружены, как указано. ( C ) Активность мутантов лиганд-связывающей петли анализировали с использованием пептида FRET в качестве субстрата. Пептид FRET 5 мкМ инкубировали с 250 нМ HpHtrA wt (черный кружок), HpHtrA S 164 A (красный квадрат), HpHtrA D 165 A (зеленый треугольник), HpHtrA S 166 A (желтые перевернутые треугольники), и HpHtrA D 168 A (синий ромб) в течение 180 мин при 37 ° C в 50 мМ буфере HEPES (pH 7,4). Данные представляют собой относительные флуоресцентные единицы (RFU) ± S.D. с флуоресцентными сигналами, полученными от пептида FRET, обработанного HpHtrA wt в течение 180 мин, установленного как 100%.

Поскольку аллостерическая петля важна для регуляции HpHtrA и связывания лиганда, мы дополнительно исследовали, влияют ли Zn ++ и Cu ++ на олигомеризацию HpHtrA через эту петлю. Белки HpHtrA обрабатывали Zn ++ и Cu ++ и олигомеризацию анализировали в белковых гелях, окрашенных Кумасси, в невосстанавливающих условиях. По сравнению с необработанным HpHtrA wt, мы наблюдали зависящий от концентрации эффект добавления Zn ++ на олигомеризацию HpHtrA.Концентрация Zn ++ , равная 50 мкМ, была достаточной для усиления олигомеризации или стабильности HpHtrA (фиг. 6A, левая панель, дорожка 2), что свидетельствует о прямом связывании Zn ++ с HpHtrA. Используя анализ теплового сдвига, мы сначала определили температуру плавления около 75 ° C для HpHtrA wt, которая довольно высока и указывает на повышенную стабильность, которая позволяет выжить в стрессовых условиях. 30,49 . Мутации D 165 и S 166 привели к увеличению термической денатурации HpHtrA, в то время как мутации S 164 и D 168 не повлияли на стабильность (рис.S7). Затем мутанты HpHtrA инкубировали с Zn ++ . HpHtrA wt был стабилизирован при концентрации приблизительно 10 мкМ Zn ++ . Аналогичный эффект был продемонстрирован для HpHtrA S 164 A, что указывает на то, что Zn ++ не мешает S 164 . Однако Zn ++ не стабилизировал HpHtrA, несущий мутации D 165 , S 166 или D 168 (фиг. 6A, правая панель). Это можно объяснить либо наблюдением, что мутанты HpHtrA D 165 A, HpHtrA S 166 A и HpHtrA D 168 A не могут образовывать стабильные олигомеры в целом, либо предположением, что Zn ++ напрямую не образует связываются с аллостерической петлей, а скорее с активным карманом HpHtrA, как это было предложено для других сериновых протеаз 33,36,37 .Чтобы ответить на этот вопрос, связывание Zn ++ дополнительно анализировали с помощью термофореза на микромасштабах (MST) (таблица 1 и фиг. S8). Связывание Zn ++ может быть обнаружено для HpHtrA wt ( K d = 23 мкМ) и HpHtrA S 164 A ( K d = 55 мкМ) с сигналом до -шумность 6,3 и 6,0 соответственно. Хотя кривые связывания также были подогнаны для HpHtrA D 165 A, S 166 A и D 168 A (рис.S8), отношения сигнал / шум были слишком низкими, чтобы доказать связывание Zn ++ с белками (таблица 1). Cu ++ также исследовали, но он сильно гасил флуоресцентный сигнал при высоких концентрациях, и поэтому анализ данных был невозможен (данные не показаны). Таким образом, наши результаты подтверждают гипотезу о том, что HpHtrA D 165 и D 168 участвуют во взаимодействии с Zn ++ в качестве предполагаемого сайта связывания. Поскольку механизм активности HpHtrA еще не был интенсивно исследован, до сих пор неизвестно, требуется ли олигомеризация для протеолитической активности или HpHtrA образует активные олигомеры в зимограмме после ренатурации.Но на основании наших данных в этом отчете мы пришли к выводу, что аллостерическая петля важна для стабильности олигомерного HpHtrA. Взаимодействие с Zn ++ может резко изменить конформацию HpHtrA, что приведет к увеличению стабильности олигомера, но также и к эффективному ингибированию протеолитической активности или распознавания субстрата. Подробный механизм олигомеризации и активности HpHtrA будет дополнительно исследован в будущем.

Рис. 6

Ионы Zn ++ и Cu ++ мешают стабильности HpHtrA через аллостерическую петлю.Чтобы исследовать влияние ZnCl 2 и CuCl 2 на стабильность и активность олигомеров HpHtrA, HpHtrA wt инкубировали с возрастающими концентрациями ZnCl 2 ( A ) и CuCl 2 ( B ). и затем анализировали с помощью окрашенного кумасси SDS-PAGE в невосстанавливающих условиях (левые панели). 4 мкМ рекомбинантного HpHtrA wt (черные кружки), HpHtrA S 164 A (красные квадраты), HpHtrA D 165 A (зеленые перевернутые треугольники), HpHtrA S 166 A (желтые треугольники) и HpHtrA D 168 A (синий ромб) инкубировали с SYPRO Orange и возрастающими концентрациями ZnCl 2 и CuCl 2 при изменении температуры от 25 до 95 ° C (увеличение на 0.5 ° C в минуту). Изменения температуры плавления ΔT m представлены нормализованными к внутреннему T m индивидуального мутанта HtrA (правые панели).

Таблица 1 Взаимодействие HpHtrA с Zn ++ .

Данные, полученные в результате экспериментов с Cu ++ , значительно отличаются от данных, полученных с Zn ++ . HpHtrA wt был лишь слегка стабилизирован при низких концентрациях Cu ++ , как было проанализировано с помощью окрашенного Кумасси SDS-PAGE в невосстанавливающих условиях (рис.6Б, левая панель). Сравнивая мутанты HpHtrA в чувствительном анализе теплового сдвига, наблюдали два режима регуляции. При низких концентрациях Cu ++ стабилизировал мутанты HpHtrA wt и HpHtrA S 164 A, но не HpHtrA D 165 A, HpHtrA S 166 A и HpHtrA D 168 A (рис. 6B, правая панель), напоминающие эффекты, обнаруженные в ответ на Zn ++ (фиг. 6A, правая панель). Более высокие концентрации Cu ++ окончательно дестабилизировали HpHtrA wt и HpHtrA S 164 A.Интересно, что мутанты HpHtrA D 165 A, HpHtrA S 166 A и HpHtrA D 168 A были более сильно дестабилизированы Cu ++ (рис. 6B, правая панель), что указывает на то, что эти сайты в HpHtrA не только участвуют в стабильности олигомера, но также непосредственно нацелены на Cu ++ . В заключение мы предполагаем, что Cu ++ имеет два связывающих мотива в молекуле HpHtrA. Первый — это активный сайт, который представляет собой сайт связывания с высоким сродством для Zn ++ и Cu ++ и может связывать металлы уже в более низких концентрациях.Это было предложено для ряда сериновых протеаз, которые связывают Zn ++ и Cu ++ через гистидин в своих карманах 33,36,37 . Второй мотив в молекуле HpHtrA представляет собой сайт связывания с низким сродством, образованный аллостерической петлей, связывание которой приводит к дестабилизации HpHtrA. Однако подробный механизм интерференции Zn ++ и Cu ++ с HpHtrA требует дальнейшего внимания и будет изучен в будущих исследованиях.

Структура раствора комплекса ESCRT-I по данным малоуглового рентгеновского рассеяния, ЭПР и FRET-спектроскопии

Реферат

ESCRT-I требуется для сортировки интегральных мембранных белков в лизосому или вакуоль в дрожжах, для цитокинеза в клетках животных и для отпочкования ВИЧ-1 из человеческих макрофагов и Т-лимфоцитов.ESCRT-I представляет собой гетеротетрамер Vps23, Vps28, Vps37 и Mvb12. Кристаллические структуры основного комплекса и варианта убиквитина E2 и С-концевых доменов Vps28 были определены, но внутренняя гибкость предотвратила кристаллизацию интактного ESCRT-I. Здесь мы охарактеризовали структуру ESCRT-I в растворе путем одновременного уточнения структуры по сравнению с малоугловым рентгеновским рассеянием и спектроскопией двойного электронно-электронного резонанса спин-меченых комплексов. Ансамбль, по крайней мере, из шести структур, включающий в себя одинаково населенную смесь закрытых и открытых конформаций, был необходим для соответствия всем данным.Этот структурный ансамбль был перекрестно подтвержден с помощью FRET-спектроскопии одиночных молекул, которая предположила наличие континуума открытых состояний. Таким образом, ESCRT-I в растворе, по-видимому, состоит приблизительно из 50% популяции одной или нескольких связанных закрытых конформаций, а остальные 50% составляют континуум открытых конформаций. Эти конформации обеспечивают ориентиры для структурного пути, с помощью которого ESCRT-I индуцирует мембранные зачатки.

Эндосомный сортировочный комплекс, необходимый для транспорта (ESCRT), комплексы необходимы для подавления убиквитин-зависимых рецепторов, биогенеза мультивезикулярных тел (MVB), почкования ВИЧ-1 и большинства других вирусов в оболочке, а также цитокинеза (1, 2) .От дрожжей до людей, ESCRT отрывают мембранные зачатки от цитозоля и отщепляют узкие шейки от их внутренней поверхности (3). ESCRT-I напрямую связывается с убиквитином через его домен варианта убиквитина E2 (UEV) (4) и функционирует вместе с ESCRT-II в зачатках мембран вдали от цитозоля (5) по неизвестному механизму. Основной путь выхода ВИЧ-1 из инфицированных клеток — через ESCRT-I (6–9). Цитокинез требует рекрутирования ESCRT-I в среднее тело (10, 11), которое является конечной связью между дочерними клетками.Эти роли сделали ESCRT-I мишенью для структурного анализа и разработки противовирусных препаратов (12, 13).

ESCRT-I состоит из одной копии каждого из Vps23, Vps28, Vps37 и Mvb12 в дрожжах (рис. 1 A ). Его структура характеризовалась по частям. Были определены структуры дрожжевых (рис. 1 B ) и человеческих доменов UEV, связанных с убиквитином (14, 15), и домена UEV человека, связанного с пептидами из ВИЧ-1 и ESCRT-0 (13, 16). ESCRT-I дрожжей связывается с ESCRT-II через C-концевой домен (CTD) Vps28 (17), структура которого была определена (18, 19) (рис.1 С ). Vps23, Vps28 и Vps37 собираются через тримерный субкомплекс, известный как «головной убор» (17, 20) (Fig. 1 D ). Vps23, Vps37 и Mvb12 образуют удлиненную ножку (21) (рис. 1 D ). Стебель и головной убор вместе составляют ядро. Четыре другие области отсутствуют в решенных структурах. Линкер, содержащий 60 остатков, соединяет UEV и стеблевую часть Vps23 и включает последовательность локализации в среднем теле (22). Гибкий линкер с 30 остатками соединяет головную часть и CTD Vps28.Предсказанная на N-конце спираль (NTH; Fig. 1 E ) Vps37 является основной, предполагается, что она в основном спиральная, и вносит вклад в связывание с мембраной (21). Гибкие гидрофобные остатки на С-конце Mvb12 могут быть убиквитин-связывающим доменом (23). Фундаментальным для понимания механизма ESCRT-I-обеспечиваемого зачатка мембран является лучшее понимание расположения функциональных доменов в трех измерениях.

Рис. 1.

Структурные домены и сайты маркировки. ( A ) Схема доменов четырех субъединиц ESCRT-I, окрашенных в синий (Vps23), красный (Vps28), серый (Vps37) и оранжевый (Mvb12), показывающий спекулятивную модель их ориентации относительно шейки мембранный бутон, адаптированный из исх.3. ( B ) UEV-домен Vps23. ( C ) CTD Vps28. ( D ) Сердечник в сборе. ( E ) NTH из Vps37. Сконструированные остатки Cys показаны в модели заполненных сфер.

ESCRT-I является представителем класса сигнальных, транспортных и регуляторных белков в этом диапазоне размеров, которые содержат внутренне неупорядоченные области. Этот класс представляет собой фундаментальную нерешенную проблему для структурных биологов. Наличие гибких областей препятствовало кристаллизации интактного ESCRT-I, тогда как низкая молекулярная масса комплекса (108 кДа) препятствовала ЭМ-анализу отдельных частиц.

Здесь мы сообщаем об усилиях по построению окончательной структуры раствора интактного ESCRT-I и разработке подхода к структурному анализу белковых комплексов среднего размера с областями внутреннего нарушения. Малоугловое рассеяние рентгеновских лучей (SAXS) и ЯМР в растворе представляют собой мощную комбинацию (24), поскольку информация о глобальной форме из SAXS дополняет ограничения ЯМР на малых расстояниях. Естественным аналогом этого подхода для более крупных комплексов является комбинирование SAXS со спектроскопическими методами, которые дают ограничения более длинного диапазона за счет использования сайт-специфичного или селективного мечения.Эти методы включают двойной электронно-электронный резонанс (DEER) (25) и FRET-спектроскопию (26). Данные SAXS, DEER и FRET были собраны для ESCRT-I в растворе. Структура молекулярного моделирования была разработана для совместного уточнения структур белковых комплексов по сравнению с SAXS и спектроскопическими данными, что привело к улучшенной модели полной структуры ESCRT-I. Мы показываем, что ESCRT-I в растворе находится в равновесии между примерно равными популяциями открытых и закрытых конформаций. Мы описываем эти популяции в терминах набора из шести структур, которые служат снимками большего континуума состояний.

Результаты

SAXS ESCRT-I.

Структура раствора полноразмерного дрожжевого ESCRT-I, не содержащего Cys, была проанализирована методом SAXS. Кривая I ( q ) по сравнению с q показала особенности до q = 0,5 Å -1 (рис. 2 A ). Максимальный размер белка D max был определен как 225 Å (фиг. 2 C ). Данные SAXS первоначально были проанализированы методом ab initio генерации огибающей (27). Полученный таким образом конверт (рис.2 D ) был удлиненным с большим лепестком на одном конце и меньшим на другом. Конверт позволил нам сделать визуально удовлетворительную посадку сердечника ESCRT-I, поместив стержень в удлиненный центр конверта, а головной убор — в одну долю (Рис. 2 E ). Однако в конверте не хватало деталей, чтобы расположить области UEV, CTD и NTH. Действительно, график Кратки (рис. 2 B ) характерен для частично развернутого или иным образом некомпактного белка (28).Принимая во внимание доказательства внутренней гибкости в соединяющих регионах ESCRT-I, целесообразность моделирования этих регионов в ab initio оболочке в уникальной конформации не ясна априори.

Рис. 2.

SAXS ESCRT-I. ( A ) Подгонка смоделированных кривых рассеяния [ I ( q )] к наблюдаемому рассеянию ESCRT-I. ( B ) График Кратки тех же экспериментальных данных и смоделированного рассеяния, показанных в A . Экспериментальные точки данных I ( q ) в A и B представляют собой среднее значение 10 последовательных измерений одного и того же образца, а полосы ошибок представляют стандартную ошибку среднего.( C ) Функция распределения пар [ P ( r )] для ESCRT-I. ( D ) Неэмпирическая молекулярная оболочка для ESCRT-I. ( E ) Суперпозиция двух уточненных EROS структур ESCRT-I. ( F ) Подгонка экспериментальных данных SAXS для A к значениям, вычисленным на основе структур, соответствующих как данным SAXS, так и DEER.

Уточнение ансамбля ESCRT-I SAXS.

Для выборки физических конфигураций ESCRT-I мы использовали крупнозернистую модель связывания с белками (29).Ядро, Vps23-UEV, Vps28-CTD и Vps37-NTH считались жесткими доменами. Взаимодействия между доменами обрабатывались на уровне остатков с помощью зависимых от аминокислот парных потенциалов и электростатических взаимодействий типа Дебая-Хюккеля. Гибкие линкерные пептиды, соединяющие четыре жестких домена, представлены в виде аминокислотных шариков на полимере с соответствующими потенциалами растяжения, изгиба и торсионного угла. Моделирование ESCRT-I методом Монте-Карло проводилось с использованием исходной модели, основанной на кристаллических структурах дрожжевого Vps23 UEV [Protein Data Bank (PDB) ID code 1UZX], дрожжевого Vps28 CTD (PDB ID code 2J9U), дрожжевого ESCRT-I core (код PDB ID 2P22), модель NTH в спиральной конформации и линкеры, созданные в стерически разрешенных, но в остальном произвольных конформациях.Полученные 10000 конформаций были сгруппированы и подогнаны под экспериментальную кривую I ( q ) с использованием ансамблевого уточнения программы SAXS (EROS) (30). Приемлемая подгонка может быть получена как минимум с двумя конформациями, имеющими одинаковый вес (рис. 2 A ). Однако ни одна единственная конформация не соответствовала данным I ( q ). Одна из двух конформаций более закрытая (черная, рис.2 E ), а другая более открытая (желтая, рис.2 E ). В более закрытой структуре оба домена UEV и CTD подходят близко к ножке в «цис», так что они оба находятся на одной стороне ножки. UEV и CTD не соприкасаются друг с другом даже в более закрытой конформации.

В более открытом строении CTD находится дальше от стебля, но все еще на грани cis , тогда как UEV отклонился от стебля, чтобы выступить за кончик стебля. В более открытой конформации нет прямых контактов между UEV или CTD и ядром.Без взаимодействий, позволяющих прочно удерживать эти домены на месте, открытая конформация, вероятно, представляет собой ансамбль структур, которые заполняют аналогичный объем рассеяния в растворе. Этот анализ привел нас к выводу, что по крайней мере половина популяции комплексов ESCRT-I в растворе принимает динамическую структуру, в которой UEV и CTD являются мобильными по отношению к ядру.

DEER EPR Анализ ESCRT-I.

Четыре набора уникальных пар Cys были сконструированы в конструкцию ESCRT-I дрожжей без Cys и помечены спиновым зондом (1-оксил-2,2,5,5-тетраметил-∆3-пирролин-3-метил) метантиосульфонат (MTSL).Пары Cys были отобраны с использованием уточненных структур EROS, чтобы ограничить самые неоднозначные междоменные расстояния. Остатки, подверженные действию растворителя, в кристаллизованных областях были выбраны, чтобы не мешать сборке комплекса. Пара Vps28 Cys27-Vps37 Cys173 была выбрана в кристаллизованной области головной части для использования в качестве контроля. Остальные три пары были разработаны для измерения положения одного из основных функциональных доменов относительно ядра. Vps23 Cys108 — Vps23 Cys256 позволил измерить разделение UEV-ядра.Vps28 Cys65 — Vps28 Cys 151 и Vps23 Cys223 – Vps37 Cys12 были использованы для измерения разделения CTD-ядра и NTH-ядра, соответственно.

Каждый меченый образец ESCRT-I давал интерпретируемые спектры DEER (рис. 3). При гауссовой аппроксимации контрольная пара Vps28 Cys27-Vps37 Cys173 давала резко пиковое распределение P ( r ) с центром при 52 Å (таблица S1). Положения меток MTSL моделировались на структурах с использованием соответствующего распределения конформеров MTSL (31).Для контрольной пары распределение P ( r ), рассчитанное на основе смоделированных координат MTSL, отлично согласуется с экспериментом (рис. 3, , верхняя часть ). Таким образом, эта метка MTSL достоверно сообщает известное внутрикомплексное расстояние в ESCRT-I. Образцы Vps23 Cys108 — Vps23 Cys256 и Vps23 Cys223– Vps37 Cys12 дали распределения P ( r ) по гауссовскому подходу, которые были примерно в два раза шире, чем внутрикорпусный P ( r ), описанный выше (Таблица S1).Из широкого распределения P ( r ) для пар UEV-, CTD- и NTH-ядра мы делаем вывод, что все эти домены являются мобильными по отношению к ядру.

Рис. 3.

ОЛЕН ESCRT-I. ( Left ) Экспериментально наблюдаемая (сплошная) модуляция V ( t ) вместе с точками, рассчитанными из шести структурных кластеров. ( Right ) Гистограммы расстояний MTSL, вычисленных по моделям. Зеленые кривые на верхних панелях показывают результаты гауссовой регуляризации.

Комбинированная обработка SAXS и DEER.

Во избежание внесения зависящих от регуляризации артефактов в структурное уточнение, структуры были уточнены непосредственно по измеренным данным DEER V ( t ). Процедура EROS (30) была модифицирована, чтобы позволить одновременную подгонку данных SAXS и DEER с минимальным ансамблем структур. При уточнении ансамбля веса структуры w k были изменены для улучшения согласования между вычисленными, усредненными по ансамблю величинами I ( q ), V ( i , j ) ( t ) и измеренные I obs ( q ), сигналы.Чтобы найти минимальный набор структур, которые совместно учитывают данные SAXS и DEER, функция была минимизирована численно с использованием алгоритма поиска Монте-Карло, в котором веса структуры варьировались между w k = 0 и w k = 1 при ограничении. В приведенной выше формуле параметр μ контролирует количество n структур с ненулевым весом w k > 0, что позволяет нам идентифицировать минимальный набор репрезентативных структур.При малых параметрах μ ≪ 1 мы получили очень хорошее совпадение с экспериментальными данными ( χ 2 <1) со многими структурами в уточненном ансамбле ( n À1). При больших параметрах μ > 1 в ансамбле было очень мало структур с ненулевыми весами, но согласие с экспериментальными данными было неудовлетворительным ( × 2 было значительно больше единицы). Баланс был достигнут при μ = 0,2, когда мы получили хорошее совпадение со всеми наборами экспериментальных данных ( χ 2 ≈ 1) только с n = 6 структурами (рис.2 F и 3).

Качественно ансамбль из шести структур (рис. 4) напоминает открытые и закрытые конформации, используемые для соответствия данным SAXS, и заполняет одну и ту же общую область пространства. Самая закрытая из шести конформаций SAXS-EPR напоминает закрытую конформацию SAXS (Fig. 2 E ). В другой структуре UEV, CTD и NTH смещены из ядра в сильно растянутом состоянии. Остальные четыре имеют один или два домена в более закрытых состояниях. UEV сворачивается к цис-стороне стебля.В каждой из трех структур с закрытой конформацией UEV, UEV заполняет аналогичную область пространства, но разные поверхности UEV взаимодействуют с немного разными частями ядра. В одной из структур сайт связывания убиквитина (14) закрыт. NTH загибается вдоль стебля, так что аналогичные области пространства заполняются. Опять же, в каждом случае точный угол между NTH и ножкой меняется, как и детали молекулярных контактов. Два из трех закрытых состояний CTD включают уплотнение у дистального конца головки, которое образовано N-концевой половиной субъединицы Vps28.Эти закрытые конформеры заполняют одну и ту же область пространства и контактируют с одной и той же частью головного убора, но четырехспиральный пучок CTD повернут на 120 ° друг от друга в двух состояниях. В третьем состоянии CTD также контактирует с N-концевой половиной Vps28, но в этом случае заполняется немного другая область пространства, и CTD направлен обратно в сторону цис-стороны сердечника. Точные конформации закрытого состояния каждого из трех доменов достаточно различаются, поэтому нельзя сделать надежные выводы о детальной природе закрытого состояния или даже о том, существует ли единственная закрытая конформация.Примечательно, что даже в самых открытых конформациях избегается пространство на «транс» стороне стебля. Таким образом, даже в контексте очень гибкой и динамичной структуры существуют определенные предпочтения для доменов, занимающих одни области пространства над другими.

Рис. 4.

Структура решения ESCRT-I. Конструкции показаны с их относительными весами, полученными при подгонке, в процентах. Субъединицы окрашены, как на рис. 1.

Объемные измерения FRET.

Мы стремились проверить уточненную структуру ESCRT-I с независимыми данными, исключенными из уточнения.Массовые данные о времени жизни FRET были получены на образце, помеченном Atto488 и Atto594 на Cys137 и Cys223 Vps23, которые находятся в домене UEV и на ножке, соответственно. Эта пара обеспечивает независимую проверку разделения ядра UEV, в отличие от пары Cys108-Cys256, помеченной MTSL, используемой в уточнении. Время жизни донора оказалось равным τ D = 3,7 нс, которое уменьшилось в присутствии акцептора до τ DA = 3,4 нс (рис.S1). Эффективность FRET, рассчитанная на основе структур (см. SI Methods ), составила E = 0,11, что хорошо согласуется со средней эффективностью E = 0,09, измеренной в эксперименте с объемным FRET.

Одномолекулярный FRET.

Чтобы обеспечить независимую проверку пары Vps28 Cys65 – Cys151, пара была помечена как Alexa488 и Alexa594. Рис. 5 A и B сравнивает измеренные гистограммы эффективности FRET (светло-коричневые широкие полосы) с гистограммой, предсказанной на основе структур модели (черные узкие полосы).Чтобы проверить сборку ESCRT-I при концентрации 40 пМ, использованной для этих экспериментов, FRET также измеряли между парой межсубъединиц Vps28 Cys27-Vps37 Cys173 (фиг. S2). Экспериментальные эффективности FRET, 〈 E app 〉 = n A / ( n A + n D ), рассчитанные из 2-мс бинов, содержащих более 50 фотонов (рис. 5 A ) или более 110 фотонов (рис.5 B ), были преобразованы в истинную эффективность FRET, 〈 E 〉, после корректировки фоновой и донорской утечки в акцепторный канал с использованием γ -фактора для корректировки различий в эффективности обнаружения донорные и акцепторные каналы и различия в квантовых выходах донорных и акцепторных красителей как 〈 E 〉 = n A / ( n A + γn D ), с γ = 2, определенным из измерений времени жизни донора (32).

Рис. 5.

Одномолекулярный FRET. Сравнение экспериментальных (светло-коричневые широкие полосы) и расчетных (черные узкие полосы) гистограмм эффективности FRET с использованием расстояний между красителями для модельных структур для порогового числа фотонов ( n T ) из ( A ) 50 и ( B ) 110 с интервалом времени ( T bin ) 2 мс. На экспериментальной гистограмме эффективность FRET каждого бина составила γ , скорректированная после вычитания средних фоновых фотонов (донор: 0.6 мс -1 ; acceptor: 1,1 мс -1 ) и поправку на утечку флуоресценции донора в канал акцептора (6%). Всплески флуоресценции от меченных только донорами молекул ( E <0,18) были исключены, и данные были предварительно отфильтрованы для удаления всплесков фотонов, в которых происходило либо мигание, либо обесцвечивание. ( C ) Предполагаемая модель для открытого состояния ESCRT-I ( Верх ), состоящего из континуума конформаций, в равновесии с закрытым состоянием ( Низ ), состоящим из одной или нескольких связанных конформаций.

Проверка модели по результатам измерений FRET.

Эффективность

FRET была рассчитана для двойного мутанта Vps28 Cys65 / Cys151 и в целом хорошо согласуется с экспериментом (фиг. 5 A и B ). Низкая эффективность хвоста измеренного распределения не наблюдается на предсказанной гистограмме. Что еще более важно, предсказанная гистограмма содержит два различных пика на E ∼ 0,60 и E ∼ 0,85, которые окружены одним широким пиком экспериментальной гистограммы.Эта разница более выражена в распределении, полученном из бинов с более высоким порогом фотонов ( n T ) из 110 фотонов, где ширина дробового шума уже (рис. 5 B ). Возможными источниками этой разницы в измеренных и предсказанных гистограммах являются ( и ) взаимное преобразование между кластерами конформаций в течение 2-миллисекундного интервала времени, которое приводит к интервалам с эффективностью FRET, промежуточной между закрытой и открытой конформациями, Ориентационное движение красителей сравнимо или медленнее, чем время бина, из-за прилипания красителей к белку для получения диапазона значений фактора ориентации κ 2 , и ( iii ) предсказанные структуры не включают конформации с промежуточной эффективностью FRET.

Первая возможность была оценена с использованием простой кинетической модели обратимых конформационных изменений между двумя состояниями, при этом каждый из трех кластеров в пределах открытого или закрытого набора конформаций рассматривается как одно состояние. Эта модель сравнивалась с гистограммами эффективности FRET, построенными с различными временными интервалами, как описано в SI Analysis , из чего мы пришли к выводу, что динамика, скорее всего, не отвечает за расширение экспериментальной гистограммы. Вторая возможность была рассмотрена путем измерения значений поляризационной анизотропии для донорных и акцепторных красителей.Значение анизотропии донора ( r a ) выше, чем ожидалось, исходя из срока службы донора ( τ D ) и времени реориентационной корреляции ( τ c ) приблизительно 0,74 нс для свободно переориентирующихся красителей, определенных на основе измерений анизотропии с временным разрешением (33) (см. Таблицу S2). Время переориентационной корреляции красителей ( τ c ), рассчитанное из и θ = 0 (угол между диполями поглощения и излучения), составляет 1-2 нс, что указывает на то, что динамика красителя не увеличивает ширину на гистограмму эффективности FRET сверх вклада дробового шума ( SI Анализ ), но может, поскольку κ 2 ≠ 2/3, вызвать небольшой сдвиг пиков эффективности FRET по сравнению с пиками, соответствующими свободному переориентации красители.Вывод из приведенного выше анализа состоит в том, что единственный широкий пик измеренной гистограммы, вероятно, отражает присутствие дополнительных конформаций, еще не учтенных при моделировании.

Обсуждение

Здесь мы применили комбинацию методов — SAXS, DEER и FRET — которые проверяют общую форму вместе с расстояниями между конкретными парами остатков в ESCRT-I.

Наблюдения здесь подтверждают ожидание того, что каждый дополнительный метод добавляет к общему информационному содержанию и более четко определяет структуру решения.Набор из трех значений R H для конструкций ESCRT-I ранее можно было интерпретировать в терминах единой открытой структуры (21). Данные SAXS могут соответствовать как минимум двум структурам, одной открытой и одной закрытой. Данные SAXS и DEER вместе могут соответствовать минимум шести, охватывая спектр более открытых и закрытых конформаций UEV, CTD и NTH относительно ядра. В более ранней гидродинамической модели ESCRT-I находился полностью в открытом состоянии. Действительно, информационного содержания предыдущего гидродинамического исследования, содержащего только три точки данных, было недостаточно для определения более чем одного состояния для трех областей.Главный вывод, который следует из настоящего анализа, — это неожиданное существование примерно 50% популяции закрытых конформаций.

Одним из самых неожиданных аспектов анализа было ограничение, накладываемое информацией о распределении в спектрах DEER. Для трех пар домен-ядро каждый из этих спектров привел к широкому распределению P ( r ) в гауссовой аппроксимации. Хотя эти распределения не использовались при уточнении, широкий набор из шести структур, возникающих в результате уточнения, отражает ту же основную конформационную гетерогенность.Гистограммы FRET одиночных молекул обеспечивают прямое измерение отобранного конформационного пространства. Пара меток ядро-CTD показала один очень широкий пик на гистограмме, который отлично перекрывался с рассчитанной гистограммой, что дает нам уверенность в модели, полученной из SAXS и DEER. Широкий и относительно безликий характер эффективности FRET подчеркивает вероятное присутствие промежуточных конформаций между шестью структурами, используемыми для соответствия данным SAXS и DEER. Важно отметить, что нет никаких доказательств того, что существует ровно шесть (или какое-то другое конкретное число) дискретных конформаций.Мы рассматриваем эти шесть структур как моментальные снимки, которые охватывают и представляют большее конформационное пространство, отобранное ESCRT-I (рис. 5 C ), концепция, поддерживаемая гистограммами FRET и широкими распределениями P ( r ) из ОЛЕНЬ.

В текущей модели ESCRT-управляемого зачатка мембраны множественные копии ESCRT-I и -II собираются, чтобы сформировать кольцо на шейке зачатка (3). Локализация ESCRT-I в шейках почек in vitro наблюдалась непосредственно (5), но природа и структура предполагаемой мембраносвязанной сборки ESCRT-I-II неизвестны.У дрожжей внутрипросветные пузырьки (ILV) в MVBs имеют диаметр 22-26 нм (34). Если предположить, что шейка бутона имеет аналогичные размеры с самим бутоном, подразумевается, что окружность шейки почки составляет приблизительно 75 нм. С максимальным размером 22 нм, видимым здесь, по крайней мере четыре комплекса ESCRT-I, выровненных от конца до конца, будут необходимы, чтобы охватить шейку почки. Внутренняя гибкость, наблюдаемая для приблизительно 50% комплексов ESCRT-I в растворе (Fig. 5 C , Top ), позволила бы комплексу регулировать свою структуру на пути биогенеза почек.После включения с ESCRT-II в мембраносвязанную сборку предсказывается единственная конформация, возможно, соответствующая закрытому состоянию, наблюдаемому в другом приблизительно 50% популяции раствора (фиг. 5 C , Bottom ). Структура раствора будет полезна в качестве ориентира для структурного пути сборки ESCRT-I-II, ответственной за индукцию шейки почки. Хотя SAXS неосуществим в настройке мембраны из-за рассеяния от липосом, методы DEER и FRET могут быть перенесены.Таким образом, сравнение спектров в растворе и в мембраносвязанных условиях может предоставить первый шаг к пониманию конформационных изменений, участвующих в формировании сборки шейки почки. Роль конформационных изменений в ESCRT-I-обеспечиваемом почковании ВИЧ-1 является еще более актуальным вопросом. Эти спектроскопические методы также должны быть переносимы в настройку ВИЧ-1, как только реакция почкования ВИЧ может быть восстановлена ​​in vitro.

Успехи и ограничения этого анализа предлагают уроки для интеграции глобальных и конкретных структурных данных на частично гибких комплексах.EROS-анализ данных SAXS выявил ансамбль структур, способных согласовать данные, но не имел информации о различном поведении отдельных доменов. Маркировка, привязанная к конкретному участку, дает важную дополнительную информацию. Сайт-специфичное спин-мечение и DEER-спектроскопия предоставили прямые доказательства того, что каждый отдельный домен был конформационно гетерогенным по отношению к ядру, вывод, который мы не могли сделать только на основе анализа SAXS. Мы использовали другой сайт-специфический структурный зонд, FRET-спектроскопию, чтобы подтвердить выводы, сделанные из двух других методов, и выявить присутствие конформационных промежуточных продуктов, которые не были обнаружены другими методами.Мультисубъединичные комплексы представляют собой серьезную проблему в структурной биологии, и интеграция ограничений от множества методов, вероятно, будет иметь решающее значение для развития молекулярного понимания функции.

Материалы и методы

При уточнении ансамбля номер N и вес w k структур k в ансамбле были получены путем одновременной подгонки к данным SAXS и DEER. Интенсивность рассеяния I k ( q ) структуры k рассчитывалась, как в работе.30 и усреднены по ансамблю. Отклонения от измеренной интенсивности МУРР I obs ( q ) были определены количественно путем суммирования по N q q точкам на кривой интенсивности, с c константа, определяемая условием. Чтобы уточнить данные DEER, возможные конформации шести меток MTSL на доменах ESCRT-I были созданы с помощью многомасштабного моделирования модуля Matlab макромолекулярной системы (31). Путем соответствующего переноса и поворота координат MTSL ротамеры были размещены на жестких доменах всех структур ESCRT-I в ансамбле.Для каждой пары меток MTSL ( i , j ) и конфигурации k комплекса ESCRT-I в ансамбле функция диполярной эволюции была рассчитана с D провалом = 52,04 МГц нм 3 . Среднее значение для всех конформаций метки MTSL, с r αβ расстояние между спиновыми метками α и β, прикрепленными к остаткам i и j , соответственно. Для проверки модели DEER метки MTSL были прикреплены к остаткам 27 и 173 в одном и том же жестком домене.Вычисленная функция диполярной эволюции V (27,173) ( t ), таким образом, одинакова для каждой структуры k и, как было обнаружено, хорошо согласуется с измеренным сигналом DEER (см. Рис. 3, Top ). Для остальных трех пар меток ( i , j ) = (108,256), (12, 223) и (65, 151) функция дипольной эволюции была усреднена по ансамблю, Отклонения от измеренных сигналов DEER были определены количественно, с помощью которых суммируется N t точек на кривой, с глубиной модуляции λ , полученной из.Статистическая ошибка оценивалась по уровню шума экспериментальных данных.

Благодарности

Мы благодарим B. Beach и M. Kostelansky за подготовку конструкции ESCRT-I без Cys, а также A. Bax за обсуждения. Данные SAXS были собраны в Стэнфордской лаборатории синхротронного излучения (SSRL), национальном пользовательском объекте, управляемом Стэнфордским университетом от имени Управления фундаментальных энергетических наук Министерства энергетики США. Программа SSRL по структурной молекулярной биологии поддерживается Министерством энергетики, Управлением биологических и экологических исследований, а также Национальными институтами здравоохранения, Национальным центром исследовательских ресурсов, Программой биомедицинских технологий.Б. была поддержана Международной исходящей стипендией Марии Кюри в рамках 7-й Рамочной программы Европейского сообщества. Эта работа была поддержана Внутренней программой Национальных институтов здравоохранения (NIH), Национальным институтом диабета, болезней пищеварительной системы и почек (WAE, GH и JHH), Целевой антивирусной программой по борьбе со СПИДом в больнице. Директор NIH (JHH), NIH Grant GM072694 (DSC) и грант Министерства образования, молодежи и спорта Чешской Республики MSM0021620835 (J.В.).

Сноски

  • Авторы: E.B., W.A.E., D.S.C., G.H., and J.H.H. спланированное исследование; E.B., B.R., D.Z.H., H.S.C., J.V. и G.H. проведенное исследование; Э. Б., Б. Р., Г. Х. внесены новые реагенты / аналитические инструменты; E.B., B.R., D.Z.H., H.S.C., J.V., W.A.E., D.S.C., G.H. и J.H.H. проанализированные данные; и W.A.E., G.H. и J.H.H. написал газету.

  • Авторы заявляют об отсутствии конфликта интересов.

  • Эта статья представляет собой прямое представление PNAS.

  • Эта статья содержит вспомогательную информацию на сайте www.pnas.org/lookup/suppl/doi:10.1073/pnas.1101763108/-/DCSupplemental.

Наноскопические оптические линейки за пределами расстояния FRET: основы и приложения

Наноскопические оптические линейки за пределами расстояния FRET: основы и приложения

В последние несколько десятилетий линейки спектроскопии на основе резонансного переноса энергии Фёрстера (FRET) служили ключевым инструментом для понимания химических и биохимических процессов, даже на уровне отдельных молекул.Поскольку процесс FRET происходит из диполь-дипольных взаимодействий, масштаб длины линейки FRET ограничен максимумом 10 нм. Недавно ученые сообщили об оптической линейке дальнего действия на основе наноматериалов, в которой можно преодолеть предел зависимости оптической линейки FRET от расстояния, и которая может быть очень полезна для мониторинга биологических процессов, происходящих на большем расстоянии, чем в масштабе 10 нм. Развитие наноскопических оптических линейок большого радиуса действия за последние десять лет показывает, что, помимо их способности работать на больших расстояниях, их яркость, длительный срок службы, отсутствие мерцания и химическая стабильность делают линейки на основе наночастиц хорошим выбором для оптических зондов большого радиуса действия.В текущем обзоре обсуждаются основные концепции и уникальные светофокусирующие свойства плазмонных наночастиц, которые полезны при разработке дальнодействующих одномерных и трехмерных оптических линеек. Кроме того, чтобы предоставить читателям обзор захватывающих возможностей в этой области, в этом обзоре обсуждаются применения линейок дальнего действия для мониторинга биологических и химических процессов. В заключение мы рассуждаем о роли оптических линейок дальнего действия в будущих научных исследованиях и обсуждаем возможные проблемы, перспективы и будущие потребности в использовании оптических линейок в технологических приложениях.

У вас есть доступ к этой статье

Подождите, пока мы загрузим ваш контент… Что-то пошло не так. Попробуй еще раз?

Флуоресцентная микроскопия с резонансным переносом энергии (FRET) — Общие понятия

Вводные понятия

Точное расположение и природа взаимодействий между конкретными молекулярными видами в живых клетках представляет большой интерес во многих областях биологических исследований, но исследованиям часто мешает ограниченное разрешение инструментов, используемых для изучения этих явлений.Обычная широкопольная флуоресцентная микроскопия позволяет локализовать флуоресцентно меченые молекулы в пределах оптического пространственного разрешения, определяемого критерием Рэлея, примерно 200 нанометров (0,2 микрометра). Однако для понимания физических взаимодействий между белками-партнерами, участвующими в типичном биомолекулярном процессе, относительная близость молекул должна быть определена более точно, чем позволяют традиционные методы оптической визуализации с дифракционным ограничением. Метод резонансной передачи энергии флуоресценции (чаще обозначаемый аббревиатурой FRET ) в применении к оптической микроскопии позволяет определять сближение двух молекул в пределах нескольких нанометров (см. Рисунок 1), расстояние, достаточно близкое для происходить молекулярные взаимодействия.

Типичные методы флуоресцентной микроскопии основаны на поглощении флуорофором света на одной длине волны (возбуждение) с последующим испусканием вторичной флуоресценции на более длинной длине волны. Длины волн возбуждения и излучения часто отделены друг от друга на десятки и сотни нанометров. Маркировка клеточных компонентов, таких как ядра, митохондрии, цитоскелет, аппарат Гольджи и мембраны, специфическими флуорофорами позволяет их локализовать в фиксированных и живых препаратах.Путем одновременного мечения нескольких субклеточных структур отдельными флуорофорами, имеющими отдельные спектры возбуждения и испускания, можно использовать специальные комбинации флуоресцентных фильтров для изучения близости меченых молекул в пределах одной клетки или участка ткани. С помощью этого метода молекулы, которые расположены ближе друг к другу, чем предел оптического разрешения, кажутся совпадающими, и эта очевидная пространственная близость подразумевает, что молекулярная ассоциация возможна. В большинстве случаев, однако, нормального разрешения флуоресцентного микроскопа с ограничением дифракции недостаточно, чтобы определить, действительно ли имеет место взаимодействие между биомолекулами.Флуоресцентный резонансный перенос энергии — это процесс, при котором происходит безызлучательная передача энергии от флуорофора в возбужденном состоянии ко второму хромофору в непосредственной близости. Поскольку диапазон, в котором может происходить передача энергии, ограничен приблизительно 10 нанометрами (100 ангстрем), а эффективность передачи чрезвычайно чувствительна к расстоянию между флуорофорами, измерения резонансной передачи энергии могут быть ценным инструментом для исследования молекулярных взаимодействий. .

Механизм резонансной передачи энергии флуоресценции включает донор флуорофора в возбужденном электронном состоянии, который может передавать свою энергию возбуждения соседнему акцептору хромофору без излучения посредством диполь-дипольных взаимодействий на большие расстояния. Теория, поддерживающая передачу энергии, основана на концепции рассмотрения возбужденного флуорофора как колеблющегося диполя, который может подвергаться обмену энергией со вторым диполем, имеющим аналогичную резонансную частоту.В этом отношении резонансная передача энергии аналогична поведению связанных осцилляторов, таких как пара камертонов, колеблющихся на одной и той же частоте. Напротив, радиационная передача энергии требует испускания и повторного поглощения фотона и зависит от физических размеров и оптических свойств образца, а также от геометрии контейнера и путей волнового фронта. В отличие от радиационных механизмов, резонансный перенос энергии может дать значительный объем структурной информации о донорно-акцепторной паре.

Резонансная передача энергии нечувствительна к окружающей оболочке растворителя флуорофора и, таким образом, дает молекулярную информацию, уникальную по сравнению с той, которая выявляется с помощью зависящих от растворителя событий, таких как гашение флуоресценции, реакции возбужденного состояния, релаксация растворителя или измерения анизотропии. Основное влияние растворителя на флуорофоры, участвующие в резонансной передаче энергии, — это влияние на спектральные свойства донора и акцептора. Безызлучательный перенос энергии происходит на гораздо больших расстояниях, чем эффекты растворителя на коротких расстояниях, а диэлектрическая природа компонентов (растворителя и макромолекулы хозяина), расположенных между задействованными флуорофорами, очень мало влияет на эффективность резонансной передачи энергии, которая в первую очередь зависит от расстояние между донорным и акцепторным флуорофором.

Явление резонансной передачи энергии флуоресценции не опосредовано излучением фотонов и, кроме того, даже не требует, чтобы акцепторный хромофор был флуоресцентным. Однако в большинстве приложений и донор, и акцептор являются флуоресцентными, и возникновение переноса энергии проявляется в тушении донорной флуоресценции и сокращении времени жизни флуоресценции, сопровождаемом также увеличением эмиссии флуоресценции акцептора. Эффективность процесса передачи энергии изменяется пропорционально обратной шестой степени расстояния, разделяющего молекулы донора и акцептора.Следовательно, измерения FRET могут использоваться в качестве эффективной молекулярной линейки для определения расстояний между биомолекулами, помеченными соответствующим донорным и акцепторным флуорохромом, когда они находятся в пределах 10 нанометров друг от друга.

Гипотетический пример резонансной передачи энергии флуоресценции между двумя флуорохромами, прикрепленными к противоположным концам одного и того же макромолекулярного белка, представлен на рисунке 1. В нативной конформации (рисунок 1 (а)) два флуорофоров разделены расстоянием приблизительно 12 нанометров, слишком далеко для передачи энергии внутримолекулярного резонанса между флуорохромами.Однако, когда белок подвергается конформационному изменению (рис. 1 (b)), два флуорохрома сближаются гораздо ближе и теперь могут участвовать в молекулярных взаимодействиях FRET. На рисунке возбуждение донорного флуорохрома показано синим свечением вокруг желтой трехъядерной ароматической молекулы, в то время как соответствующая акцепторная эмиссия (рисунок 1 (b)) представлена ​​зеленым свечением, окружающим второй гетероциклический флуорохром справа. -ручная сторона белка.Измерения передачи энергии часто используются для оценки расстояний между участками макромолекулы и влияния конформационных изменений на эти расстояния. В экспериментах этого типа степень передачи энергии используется для расчета расстояния между донором и акцептором и получения структурной информации о макромолекуле.

Хотя флуоресцентный резонансный перенос энергии часто используется для исследования межмолекулярных и внутримолекулярных структурных и функциональных модификаций белков и липидов, основным препятствием для реализации методов FRET-микроскопии в живых клетках является отсутствие подходящих методов мечения конкретных внутриклеточных белки с соответствующими флуорофорами.Клонирование зеленого флуоресцентного белка медузы ( GFP ) и его экспрессия в широком спектре типов клеток стали критическим ключом к разработке маркеров как для экспрессии генов, так и для структурной локализации белка в живых клетках. Было разработано несколько вариантов мутации этого белка, различающихся по спектру, включая флуоресцентный белок, излучающий синий свет ( синий флуоресцентный белок , BFP ). Спектры возбуждения и излучения для нативных мутантов GFP и BFP достаточно разделены по длинам волн, чтобы быть совместимыми с подходом FRET.Рисунок 2 иллюстрирует стратегию обнаружения белок-белковых взаимодействий с использованием флуоресцентного резонансного переноса энергии и мутантных флуоресцентных белков. Если два белка, один из которых помечен BFP (донор), а другой — GFP (акцептор), физически взаимодействуют, то при возбуждении комплекса при максимальной длине волны поглощения будет наблюдаться повышенная интенсивность в максимуме эмиссии акцептора (510 нанометров). (380 нм) донора. Неспособность белков образовать комплекс приводит к отсутствию флуоресцентного излучения акцептора (GFP).

В сочетании с достижениями в области импульсных лазеров, микроскопической оптики и компьютерных технологий визуализации разработка методов маркировки, в которых донорные и акцепторные флуорофоры фактически являются частью самих биомолекул, позволила визуализировать динамические взаимодействия белков в живых клетках. В дополнение к исследованию взаимодействий белков-партнеров, недавние применения флуоресцентного резонансного переноса энергии включают исследования активности протеаз, изменений потенциалов мембранного напряжения, метаболизма кальция и проведение высокопроизводительных скрининговых анализов, таких как количественная оценка экспрессии генов в одиночные живые клетки.

Принципы передачи энергии резонанса флуоресценции

Процесс резонансной передачи энергии ( RET ) может происходить, когда донорный флуорофор в электронно возбужденном состоянии передает свою энергию возбуждения соседнему хромофору, акцептору. В принципе, если спектр излучения флуоресценции молекулы-донора перекрывает спектр поглощения молекулы-акцептора и они находятся в пределах минимального пространственного радиуса, донор может напрямую передавать свою энергию возбуждения акцептору через диполь-дипольные межмолекулярные соединения на большие расстояния. связь.Теория, предложенная Теодором Фёрстером в конце 1940-х годов, первоначально описывала молекулярные взаимодействия, участвующие в резонансной передаче энергии, и Фёрстер также разработал формальное уравнение, определяющее взаимосвязь между скоростью передачи, межхромофорным расстоянием и спектральными свойствами задействованных хромофоров.

Резонансный перенос энергии — это безызлучательный квантово-механический процесс, который не требует столкновения и не требует выделения тепла. Когда происходит передача энергии, молекула-акцептор гасит флуоресценцию молекулы-донора, и если акцептор сам является флуорохромом, наблюдается усиленное или сенсибилизированное излучение флуоресценции (см. Рисунок 3).Это явление можно наблюдать, возбуждая образец, содержащий как донорные, так и акцепторные молекулы, светом с длинами волн, соответствующими максимуму поглощения донорного флуорофора, и детектируя свет, излучаемый с длинами волн с центром вблизи максимума излучения акцептора. Альтернативный метод обнаружения, быстро набирающий популярность, заключается в измерении времени жизни флуоресценции донорного флуорофора в присутствии и в отсутствие акцептора.

На рисунке 3 представлена ​​диаграмма Яблонского, иллюстрирующая связанные переходы между испусканием донора и поглощением акцептора при резонансном переносе энергии флуоресценции.Абсорбционные и эмиссионные переходы представлены прямыми вертикальными стрелками (зелеными и красными соответственно), а колебательная релаксация — волнистыми желтыми стрелками. Связанные переходы показаны пунктирными линиями, что указывает на их правильное расположение на диаграмме Яблонского, если они возникли в результате опосредованных фотонами электронных переходов. В присутствии подходящего акцептора донорный флуорофор может передавать энергию возбужденного состояния непосредственно акцептору, не испуская фотон (показано синей стрелкой на рисунке 3).Получающееся в результате сенсибилизированное флуоресцентное излучение имеет характеристики, аналогичные спектру излучения акцептора.

Чтобы произошла резонансная передача энергии, должны быть выполнены несколько критериев. В дополнение к перекрывающимся спектрам излучения и поглощения донорных и акцепторных молекул, два задействованных флуорофора должны располагаться на расстоянии от 1 до 10 нанометров друг от друга. Как описано в уравнениях, выведенных Фёрстером (и обсуждаемых ниже), эффективность передачи энергии между донорными и акцепторными молекулами уменьшается в шестой степени расстояния, разделяющего их.Следовательно, способность донорного флуорофора передавать свою энергию возбуждения акцептору за счет безызлучательного взаимодействия резко снижается с увеличением расстояния между молекулами, ограничивая явление FRET максимальным радиусом разделения донор-акцептор, составляющим приблизительно 10 нанометров. На расстояниях менее 1 нанометра возможны несколько других режимов передачи энергии и / или электронов. Зависимость процесса резонансной передачи энергии от расстояния является основной основой его полезности при исследовании молекулярных взаимодействий.В исследованиях живых клеток с участием молекул, меченных донорными и акцепторными флуорофорами, резонансная передача энергии будет происходить только между молекулами, которые находятся достаточно близко, чтобы биологически взаимодействовать друг с другом.

Дополнительным требованием для резонансной передачи энергии является то, что время жизни флуоресценции донорной молекулы должно быть достаточным для того, чтобы событие могло произойти. Как скорость ( K (T) ), так и эффективность ( E (T) ) передачи энергии напрямую связаны со временем жизни донорного флуорофора в присутствии и в отсутствие акцептора.Согласно теории Фёрстера и подтвержденной экспериментально, скорость передачи энергии определяется уравнением:

KT = (1 / τD) • [R0 / r] 6

, где R (0) — критическое значение Фёрстера расстояние , τ (D) — время жизни донора в отсутствие акцептора, а r — расстояние, разделяющее донорные и акцепторные хромофоры. Критическое расстояние Фёрстера ( R (0) ) определяется как радиус разделения акцептор-донор, для которого скорость передачи равна скорости распада донора (снятия возбуждения) в отсутствие акцептора.Другими словами, когда радиус донора и акцептора ( r ) равен расстоянию Ферстера, эффективность переноса составляет 50 процентов. На этом радиусе разделения половина энергии возбуждения донора передается акцептору за счет резонансной передачи энергии, а другая половина рассеивается за счет комбинации всех других доступных процессов, включая излучение флуоресценции.

Концептуально критическое расстояние Фёрстера — это максимальная длина разделения между донорными и акцепторными молекулами, при которой все еще будет происходить резонансная передача энергии.Значение критического расстояния обычно находится в диапазоне от 2 до 6 нанометров, что, к счастью, порядка многих размеров молекул белка. Кроме того, диапазон критических расстояний также соответствует нескольким другим биологически значимым параметрам, таким как толщина клеточной мембраны и расстояние, разделяющее сайты на белках, имеющих несколько субъединиц. Значение R (0) (в нанометрах) может быть вычислено из следующего выражения:

R0 = 2,11 × 10-2 • [

κ

2 • Дж (λ) • η-4 • QD] 1/6

, в котором κ -квадрат — коэффициент, описывающий относительную ориентацию в пространстве между переходными диполями донора и акцептора, Дж (λ) — интеграл перекрытия в области излучения донора. и спектры поглощения акцептора (с длиной волны, выраженной в нанометрах), η представляет показатель преломления среды, а Q (D) представляет собой квантовый выход донора.

Эффективность передачи энергии, E (T) , является мерой доли фотонов, поглощенных донором, которые передаются акцептору, и связана с расстоянием разделения донора и акцептора, r , соотношением уравнение:

r = R0 • [(1 / ET) — 1] 1/6

и E (T) вычисляется как:

ET = 1 — (τDA / τD)

, где τ (DA) — время жизни донора в присутствии акцептора, а τ (D) — время жизни донора в отсутствие акцептора.Следовательно, измеряя время жизни донорной флуоресценции в присутствии и в отсутствие акцептора (что указывает на степень тушения донора из-за акцептора), можно определить расстояние, разделяющее молекулы донора и акцептора. Во многих широко применяемых методах эффективность передачи энергии определяется путем измерения в установившемся режиме относительной средней интенсивности флуоресценции донора в присутствии и в отсутствие акцептора (а не путем измерения времени жизни).

Таким образом, скорость передачи энергии зависит от степени перекрытия спектров между спектрами излучения донора и поглощения акцептора (см. Рисунок 4), квантового выхода донора, относительной ориентации дипольных моментов перехода донора и акцептора, и расстояние, разделяющее молекулы донора и акцептора. Любое событие или процесс, которые влияют на расстояние между донором и акцептором, будут влиять на скорость передачи резонансной энергии, что позволяет количественно оценить явление при условии, что артефакты можно контролировать или устранять.

На рисунке 4 представлены спектры поглощения и излучения голубого флуоресцентного белка ( CFP , донор) и красного флуоресцентного белка ( RFP или DsRed , акцептор) в сравнении с их потенциальным применением в качестве пара резонансного переноса энергии флуоресценции. Спектры поглощения обоих биологических пептидов показаны красными кривыми, а спектры испускания представлены синими кривыми. Область перекрытия спектров излучения донора и поглощения акцептора представлена ​​серой областью у основания кривых.Всякий раз, когда спектральное перекрытие молекул слишком сильно увеличивается, возникает явление, известное как спектральное просачивание или кроссовер , в котором сигнал от возбужденного акцептора (возникающий из возбуждающего освещения донора) и излучение донора обнаруживаются акцепторный канал излучения. Результатом является высокий фоновый сигнал, который необходимо выделить из излучения слабой флуоресценции акцептора.

Основная теория безызлучательного переноса энергии непосредственно применима к паре донор-акцептор, разделенной фиксированным расстоянием, и в этом случае скорость передачи энергии является функцией расстояния Ферстера, R (0) , которое в свою очередь зависит от κ -квадрат, J (λ) , η и Q (D) .Если эти факторы известны, можно рассчитать расстояние между донором и акцептором. Для описания таких ситуаций, как множественные акцепторные хромофоры и распределения расстояний, требуются более сложные формулировки. В таблице 1 представлена ​​серия экспериментально измеренных критических расстояний Фёрстера, которые были установлены из спектрального перекрытия нескольких популярных пар донорно-акцепторных флуорофоров. Поскольку переменная включает выход донорного кванта и степень спектрального перекрытия, оба из которых зависят от локализованных условий окружающей среды, значения расстояния Ферстера должны определяться в тех же экспериментальных условиях, что и те, которые используются для исследования резонансного переноса энергии.

Показатель преломления среды передачи энергии обычно известен из состава растворителя или может быть оценен для конкретной макромолекулы и обычно принимается равным 1,4 в водном растворе. Квантовый выход донора определяется путем сравнения со стандартными флуорофорами с известным квантовым выходом. Поскольку Q (D) появляется как шестой корень при вычислении R (0) , небольшие ошибки или неопределенности в значении Q (D) не имеют большого влияния на расчет расстояния Ферстера.Также из-за зависимости корня шестой степени, R (0) не сильно зависит от изменений J (λ) , но интеграл перекрытия все равно должен оцениваться для каждой пары донор-акцептор. В общем, более высокая степень перекрытия между спектром излучения донора и спектром поглощения акцептора дает более высокие значения критического расстояния Ферстера.

Критическое расстояние Фёрстера для обычных пар донор-акцептор RET
Донор Акцептор Расстояние Ферстера (нанометры)
Триптофан Дансил 2.1
ИАЭДАНЫ (1) ДДПМ (2) 2,5 — 2,9
BFP DsRFP 3,1 — 3,3
Дансил FITC 3,3 — 4,1
Дансил Октадецилродамин 4.3
CFP GFP 4.7 — 4,9
CF (3) Техасский красный 5.1
Флуоресцеин Тетраметилродамин 4,9 — 5,5
Cy3 Cy5 > 5,0
GFP YFP 5,5 — 5,7
BODIPY FL (4) BODIPY FL (4) 5.7
Родамин 6G Малахитовый зеленый 6.1
FITC Эозин тиосемикарбазид 6,1 — 6,4
B-фикоэритрин Cy5 7.2
Cy5 Cy5.5 > 8,0

(1) 5- (2-иодацетиламиноэтил) аминонафталин-1-сульфоновая кислота
(2) N- (4-диметиламино-3,5-динитрофенил) малеимид
(3) сукцинимидиловый эфир карбоксифлуоресцеина
(4) 4,4-дифтор-4-бора-3a, 4a-диаза-s-индацен

Таблица 1

Неопределенность в оценке фактора ориентации ( κ -квадрат) широко обсуждалась в литературе, и, несмотря на экспериментальные доказательства того, что теория Фёрстера действительна и применима к измерению расстояний, эта переменная продолжала оставаться в силе. несколько спорно.Важно понимать, что расстояния Ферстера обычно приводятся для предполагаемого значения κ в квадрате, обычно это динамически усредненное значение 2/3 (0,67). Это предполагаемое значение является результатом рандомизации ориентации донора и акцептора посредством вращательной диффузии до передачи энергии. Фактор ориентации зависит от относительной ориентации в пространстве диполя излучения донора и диполя поглощения акцептора и может находиться в диапазоне от нуля до 4. Значение 1 соответствует параллельным диполям перехода, а значение 4 соответствует диполям, которые оба являются параллельные и коллинеарные.

Из-за связи корня шестой степени с расстоянием Ферстера, изменение коэффициента ориентации от 1 до 4 приводит только к 26-процентному изменению рассчитанного расстояния, а максимальная погрешность в 35 процентов возможна, когда обычно принимаемое значение 0,67 применяется. Наиболее серьезная потенциальная ошибка возникает, если диполи ориентированы точно перпендикулярно друг другу и соответствующее значение в квадрате κ становится равным нулю. Было использовано несколько методов работы с неопределенностью, включая предположение, что существует ряд статических ориентаций, которые не изменяются в течение времени жизни флуорофора в возбужденном состоянии.Измерения анизотропии флуоресценции донора и акцептора могут позволить определить пределы для отклонения в квадрате κ . Кроме того, использование флуорофоров с низкой поляризацией флуоресценции (из-за излучения нескольких перекрывающихся переходов) снижает неопределенность фактора ориентации. Ограничение возможных значений κ -квадрат таким образом снижает потенциальную ошибку вычисления расстояния до 10 процентов.

Во многих случаях фактор ориентации трудно, если вообще возможно, определить, а точное значение переменной часто рассматривается как непреодолимая проблема.Однако некоторые свидетельства указывают на ограничение важности фактора в расчетах резонансного переноса энергии. Сравнение донорных и акцепторных расстояний с использованием резонансной спектроскопии переноса энергии и рентгеновской дифракции в значительной степени подтверждает обоснованность принятия значения 0,67 для фактора (как предлагается теорией Фёрстера), по крайней мере, для небольших пептидов и белков. Большая неопределенность существует для более крупных белков. Использование этого значения для фактора ориентации допустимо при предположении, что зонды донора и акцептора могут свободно совершать неограниченное изотропное движение.Дальнейшее обоснование получено из экспериментальных доказательств того, что для флуорофоров, прикрепленных одинарной или двойной связью к макромолекулам, сегментарные движения донора и акцептора имеют тенденцию приводить к динамически рандомизированным ориентациям.

Для слабосвязанных флуорохромов свободное вращательное движение вокруг одинарных связей должно позволить использовать среднее значение ориентации, но неограниченное движение молекул, связанных через несколько сайтов связывания, вероятно, не происходит. С другой стороны, крайние значения ноль и 4 для κ -квадрат требуют полной поляризации флуоресценции донора и акцептора, а это условие маловероятно.Статистические расчеты были представлены некоторыми исследователями, которые утверждают, что расстояния распределения донор-акцептор и их ориентация определяют наблюдаемое среднее расстояние. При условии, что наблюдается некоторое распределение наблюдаемого расстояния (и это не ограничивается слишком близким расположением донора и акцептора относительно R (0) ), можно надежно получить среднее расстояние между флуорофорами и оценить погрешность, обусловленную фактором ориентации. .

Зависимость фактора ориентации ( κ — в квадрате) от относительной ориентации диполя излучения донора и диполя поглощения акцептора (показано на рисунке 5) дается уравнением:

κ

2 = (cos θT — 3cos θDcos θA) 2 = (sin θD sin θAcos Φ — 2cos θDcos θA) 2

, где θ (T) — угол между диполем перехода излучения донора и диполем перехода поглощения акцептор, θ (D), и θ (A), — это углы между этими диполями и вектором, соединяющим донор и акцептор, а Φ — угол между плоскостями, содержащими два переходных диполя.

Эффективность передачи энергии наиболее чувствительна к изменениям расстояния, когда расстояние между донорами и акцепторами приближается к расстоянию Ферстера ( R (0) ) для двух молекул. Рисунок 6 иллюстрирует экспоненциальную зависимость между эффективностью переноса и расстоянием, разделяющим донор и акцептор. Эффективность быстро увеличивается до 100 процентов, когда расстояние разделения уменьшается ниже R (0) , и, наоборот, уменьшается до нуля, когда r больше, чем R (0) .Из-за сильной (шестой степени) зависимости эффективности переноса от расстояния измерения расстояния разделения донор-акцептор надежны только в том случае, если радиус донора и акцептора находится в пределах расстояния Ферстера в два раза. Когда r составляет приблизительно 50 процентов от R (0) , эффективность резонансной передачи энергии близка к максимальной, и более короткие расстояния не могут быть надежно определены. Когда расстояние донор-акцептор превышает значение R (0) на 50 процентов, наклон кривой настолько пологий, что более длинные разделительные расстояния не разрешаются.

Практическое значение критического расстояния Ферстера состоит в том, что это значение дает представление о диапазоне расстояний разделения, который может быть определен FRET для данной пары датчиков (см. Таблицу 1). Поскольку измерение передачи энергии очень чувствительно к изменению расстояния, когда расстояния донор-акцептор близки к расстоянию Ферстера, приблизительные размеры целевого молекулярного взаимодействия являются наиболее важным фактором при выборе пары флуоресцентных красителей.Другие факторы, которые следует учитывать, в зависимости от того, проводятся ли измерения в установившемся режиме или с временным разрешением, включают химическую стабильность, квантовый выход и время жизни флуорофора. Поскольку для обычных методов флуоресцентного резонансного переноса энергии не существует внутреннего эталона расстояния, расстояния, рассчитанные путем измерения эффективности переноса, относятся к расстоянию Ферстера, которое выводится из спектроскопических данных, измеренных на парах донор-акцептор.

Явление резонансной передачи энергии с помощью механизма Ферстера является сложным в некоторых аспектах, но простым и надежным по своему результирующему эффекту.Расстояния Ферстера точно предсказываются из спектральных свойств донора и акцептора, и, поскольку никаких исключений из теории еще не выявлено, можно предположить, что резонансный перенос энергии происходит при любых условиях, при которых пара молекулы донор-акцептор находится в непосредственной близости. Сложность теории, описывающей перенос диполя, возникает не из-за самого механизма передачи, а из-за наличия распределений расстояний (включая неслучайные распределения) и диффузии молекул донора и акцептора.Когда предпринимаются шаги для усреднения зависимости передачи энергии от расстояния по диапазону геометрических форм и временных рамок, FRET представляет собой надежный метод исследования пространственного распределения между взаимодействующими молекулами.

Применение методов FRET в оптической микроскопии

Параметры конфигурации микроскопа для исследований флуоресцентного резонансного переноса энергии варьируются в зависимости от требований флуорофоров, образца и режима (-ов) визуализации, но практически любой прямой или инвертированный микроскоп можно дооснастить для FRET-микроскопия (см. Рисунок 7).Как правило, микроскоп должен быть оборудован охлаждаемой и усиленной системой CCD-камеры с высоким разрешением (12 бит), соединенной с качественными интерференционными фильтрами, имеющими низкие уровни перекрестных помех (минимальный уровень блокировки) и полосы пропускания, соответствующие спектрам флуорофора. Чувствительность детектора определяет, насколько узкой может быть полоса пропускания фильтра, при этом сбор данных может продолжаться с приемлемой скоростью с минимальным спектральным сквозным шумом. В большинстве случаев для получения изображений следует использовать одно дихроматическое зеркало, соединенное с колесами или ползунками фильтров возбуждения и излучения, чтобы минимизировать или исключить сдвиги изображения.

Широкопольная флуоресцентная микроскопия страдает от излучения флуорофора, возникающего выше и ниже фокальной плоскости, что дает изображения со значительным расфокусированным сигналом, который снижает контраст и приводит к ухудшению качества изображения. Эта проблема усугубляется в микроскопии FRET из-за изначально низких уровней сигнала, возникающих в результате резонансной передачи энергии. Методы цифровой деконволюции могут быть связаны с оптическим секционированием, чтобы уменьшить или исключить сигналы вдали от фокальной плоскости, но этот процесс требует больших вычислительных ресурсов и может быть недостаточно быстрым для многих экспериментов по динамической визуализации FRET.Конфокальные методы лазерного сканирования могут применяться к FRET-микроскопии для значительного улучшения латерального разрешения, позволяя собирать последовательные оптические срезы с интервалами, приближающимися к реальному времени. Основным недостатком конфокальной микроскопии является ограничение длин волн возбуждения стандартными лазерными линиями, доступными для конкретной системы, что ограничивает выбор пар флуорофора донора и акцептора в экспериментах по резонансному переносу энергии. Многофотонное возбуждение также может использоваться в сочетании с методами FRET и меньше повреждает клетки из-за задействованных более длинных волн возбуждения.Кроме того, артефакты автофлуоресценции и фотообесцвечивание образца с меньшей вероятностью возникают в ограниченном объеме возбуждения, характерном для многофотонного возбуждения.

Типичная конфигурация микроскопа, позволяющая наблюдать живые клетки в культуре с несколькими мотивами изображения флуоресцентного резонансного переноса энергии, представлена ​​на рисунке 7. Инвертированный микроскоп для культуры тканей оснащен стандартной вольфрам-галогенной лампой на столбе для исследования и записи. ячейки, использующие стандартное светлое поле, фазово-контрастное или дифференциально-интерференционное ( DIC ) освещение.Обратите внимание, что последние два метода усиления контраста можно использовать в сочетании с флуоресценцией, чтобы выявить пространственное расположение флуорофоров в клеточной архитектуре. Стандартная система CCD-камеры с охлаждением Пельтье прикреплена к тринокулярной головке микроскопа для получения широкоугольной флуоресценции и захвата изображений в светлом поле.

Эксперименты по резонансной передаче энергии проводятся с использованием мультиспектрального освещения с использованием либо широкопольного освещения (дуговая разрядная лампа), либо конфокальной сканирующей приставки в реальном времени, оснащенной высокоскоростной дисковой системой Нипкова.Луч аргонно-криптонового лазера сначала фильтруется через акустооптическое устройство с перестраиваемой длиной волны для выбора конкретных длин волн возбуждения перед прохождением к конфокальной сканирующей головке. Изображения собираются с помощью двух охлаждаемых ПЗС-камер высокого разрешения Gen III с усиленным охлаждением, считывающих отдельные каналы, и передаются в буфер на главный компьютер. Сканирование образца в боковой ( x и y ) и осевой ( z ) плоскостях позволяет собирать оптические срезы для восстановления трехмерного изображения.Различные программы обработки изображений совместимы с проиллюстрированной конфигурацией микроскопа.

Основываясь на фундаментальных принципах этого явления, при проведении измерений резонансного переноса энергии флуоресценции с помощью оптического микроскопа следует учитывать ряд важных практических моментов:

  • Необходимо тщательно контролировать концентрации донорных и акцепторных флуорофоров. Статистически самая высокая вероятность достижения резонансного переноса энергии флуоресценции происходит, когда несколько акцепторных молекул окружают одну донорную молекулу.
  • Фотообесцвечивание необходимо исключить, поскольку артефакт может изменить молекулярное соотношение донора и акцептора и, следовательно, измеренное значение процесса резонансной передачи энергии.
  • Спектр излучения донорной флуоресценции и спектр поглощения акцептора должны иметь значительную область перекрытия.
  • Прямое возбуждение акцептора в диапазоне длин волн, используемом для возбуждения донора, должно быть минимальным. Распространенным источником ошибок в измерениях с помощью FRET-микроскопии в установившемся режиме является обнаружение донорной эмиссии с помощью наборов акцепторных фильтров.
  • Длины волн излучения как донора, так и акцептора должны совпадать с максимальным диапазоном чувствительности детектора.
  • Спектры поглощения и излучения донора должны иметь минимальное перекрытие, чтобы уменьшить возможность самопереноса от донора к донору.
  • Донорная молекула должна быть флуоресцентной и иметь достаточно длительное время жизни, чтобы произошла резонансная передача энергии.
  • Донор должен обладать низкой поляризационной анизотропией, чтобы минимизировать неопределенности в значении фактора ориентации (-квадрат).Этому требованию удовлетворяют доноры, испускание которых происходит в результате нескольких перекрывающихся переходов возбуждения.
  • При использовании методов маркировки антител не следует изменять биологическую активность реагентов, конъюгированных с донорными и акцепторными флуорохромами. Любое снижение активности серьезно повлияет на достоверность результирующих измерений резонансного переноса энергии.
  • Поскольку флуоресцентный резонансный перенос энергии требует, чтобы молекулы донора и акцептора имели соответствующее дипольное выравнивание и располагались в пределах 10 нанометров друг от друга, необходимо учитывать третичную структуру реагентов, к которым присоединены молекулы.Например, когда донорно-акцепторные молекулы могут быть присоединены к различным структурным местоположениям (таким как карбокси или аминоконце) на белке, возможно, что FRET не будет наблюдаться, даже если белки действительно взаимодействуют, потому что молекулы донора и акцептора расположены на противоположных концах взаимодействующих молекул.
  • Живые клетки, меченные зелеными флуоресцентными мутантами белка для исследований FRET, должны быть проанализированы с использованием традиционных иммуногистохимических методов, чтобы убедиться, что меченый белок принимает ту же внутриклеточную среду обитания и свойства, что и нативный аналог.

Для того, чтобы явление флуоресцентного резонансного переноса энергии предоставляло значимые данные в качестве инструмента в оптической микроскопии, необходимо оптимизировать как подготовку образца, так и параметры визуализации. Выбор подходящих донорных и акцепторных зондов и способа их использования в качестве молекулярных меток является серьезной проблемой. Кроме того, как только стратегия маркировки, которая разрешает передачу энергии, была разъяснена, широкий спектр методов может быть использован для выполнения самого измерения.Большинство количественных исследований флуоресцентной микроскопии проводится путем измерения интенсивности флуоресцентного излучения. Обнаружение FRET на основе интенсивности флуоресценции обычно достигается путем отслеживания изменений относительных величин интенсивности излучения на двух длинах волн, соответствующих донорному и акцепторному хромофорам. Когда условия подходят для возникновения резонансного переноса энергии флуоресценции, увеличение эмиссии акцептора ( I (A) ) сопровождается сопутствующим уменьшением интенсивности эмиссии донора ( I (D) ).

Хотя изменение относительной интенсивности излучения донора или акцептора можно рассматривать как показатель резонансного переноса энергии, обычно используется отношение двух значений, I (A) / I (D) , как мера FRET. Величина отношения зависит от среднего расстояния между парами донор-акцептор и нечувствительна к различиям в длине пути и объеме, доступном для возбуждающего светового луча. Любое состояние образца, которое вызывает изменение относительного расстояния между парами молекул, приводит к изменению соотношения испускания донора и акцептора.Следовательно, FRET можно наблюдать в микроскоп путем преимущественного возбуждения донорного флуорофора и обнаружения повышенного излучения взаимодействующего акцепторного флуорофора, сопровождаемого уменьшением флуоресценции донора, вызванным тушением из-за передачи энергии. Измерение FRET с использованием подхода мониторинга интенсивности называется установившимся режимом флуоресцентным резонансным переносом энергии.

Подходящие донорные и акцепторные зонды выбираются на основе их спектральных характеристик поглощения и излучения.Для максимальной резонансной передачи энергии спектр излучения донора должен существенно перекрывать спектр поглощения акцептора. Кроме того, должно быть минимальное прямое возбуждение акцепторного флуорофора в максимуме возбуждения донора, и не должно быть значительного перекрытия эмиссии между донором и акцептором в области длин волн, в которой происходит эмиссия акцептора. На практике может быть сложно идентифицировать пары донор-акцептор, удовлетворяющие этим требованиям.Ситуация часто осложняется тем фактом, что имеющиеся в продаже наборы флуоресцентных фильтров не полностью эффективны в пропускании только желаемых длин волн, и может передаваться небольшой процент света за пределами проектной полосы пропускания. Если не используются очень хорошо охарактеризованные и контролируемые системы экспрессии, может быть трудно определить точную концентрацию донорных и акцепторных флуорофоров. Дополнительные корректировки могут также потребоваться для автофлуоресценции, фотообесцвечивания и фоновой флуоресценции.

Типичное исследование внутриклеточной белковой ассоциации в живой культуре клеток проиллюстрировано на Рисунке 8 для событий, связанных с апоптозом, физическим процессом гибели клеток в результате сложного каскада последовательных взаимодействий. Генные продукты, непосредственно участвующие в цепочке событий, могут быть помечены путем слияния с соответствующими членами семейства флуоресцентных белков (в данном случае BFP и GFP) для совместной экспрессии в одной и той же клетке, чтобы исследовать специфические ассоциации с помощью FRET.Белки, участвующие в апоптозе, взаимодействуют внутри митохондрий и демонстрируют постепенное уменьшение связывания по мере того, как происходит запрограммированная гибель клеток. Таким образом, изображение излучения донора (рис. 8 (a)) содержит только флуоресценцию от белков, меченных BFP, в то время как соответствующий профиль излучения акцептора (рис. 9 (b)) иллюстрирует сигналы, обусловленные белками, меченными GFP (и некоторый вклад от белков, меченных GFP). донорская эмиссия). Фильтр FRET (рис. 8 (c)), как описано ниже, выявляет флуоресценцию, полученную в результате резонансного переноса энергии между двумя белками

Среди факторов, которые могут потенциально повлиять на точность измерений резонансного переноса энергии флуоресценции в целом, некоторые из них очень специфичны. к оптическому микроскопу.Основной целью микроскопических исследований является получение изображений с высоким разрешением, и это требует особого внимания к качеству и характеристикам оптических фильтров, используемых для спектрального различения длин волн поглощения и излучения донора и акцептора. Чтобы максимизировать отношение сигнал / шум (без вредного воздействия на образец или исследуемый процесс), необходимо тщательно сбалансировать интенсивность и время воздействия возбуждающего света с концентрацией донорных и акцепторных флуорофоров и детектора. эффективность.Если концентрация донорно-акцепторных флуорофоров чрезмерна, может произойти самотушение, влияющее на точность измерений FRET. Фотообесцвечивание является проблемой всех флуорофоров и может влиять на соотношение донор-акцептор, изменяя измерения флуоресценции. Избыточная интенсивность освещения также может повредить образцы, особенно содержащие живые клетки или ткани.

Метод, известный как донорский фотообесцвечивающий резонансный перенос энергии флуоресценции ( pbFRET ), который использует процесс фотообесцвечивания для измерения FRET, часто применяется при исследовании фиксированных образцов.Основанный на попиксельном анализе, этот метод был применен для измерения отношений близости между белками клеточной поверхности, меченными моноклональными антителами, конъюгированными с флуорофором. Фотообесцвечивание FRET основано на теории, согласно которой флуорофор чувствителен к фотоповреждению только тогда, когда он находится в возбужденном состоянии. Статистически только небольшая часть молекул находится в возбужденном состоянии в любой момент времени, и поэтому флуорофоры с более длительным временем жизни флуоресценции имеют более высокую вероятность фотоповреждения и демонстрируют более высокую скорость фотообесцвечивания.

Экспериментальные данные, подтверждающие эту концепцию, продемонстрировали, что время фотообесцвечивания флуорофора обратно пропорционально времени его жизни в возбужденном состоянии. Возникновение резонансной передачи энергии снижает время жизни флуоресценции молекулы донора, эффективно защищая ее от фотообесцвечивания. Расчеты pbFRET основаны на уменьшении скорости фотообесцвечивания донора по сравнению с измеренной для донора в отсутствие резонансной передачи энергии. Измерение фотообесцвечивания в исследованиях FRET требует относительно длительного периода времени и поэтому наиболее применимо к образцам фиксированных клеток, в которых временные данные не важны, а влияние фотообесцвечивания на функцию клеток не является проблемой.В некоторых отношениях метод фотообесцвечивания доноров менее сложен, чем измерение сенсибилизированного излучения, хотя подгонка постоянных времени к кривым фотообесцвечивания, включающим несколько компонентов, представляет некоторые дополнительные трудности.

Эффективность передачи энергии также может быть определена с помощью методов фотообесцвечивания акцептора , в которых изменение тушения донорной эмиссии измеряется путем сравнения значения до и после селективного фотообесцвечивания акцепторной молекулы.Анализ изменения интенсивности флуоресценции донора в одних и тех же областях образца до и после удаления акцептора имеет то преимущество, что требует подготовки только одного образца, и напрямую связывает эффективность передачи энергии с флуоресценцией как донора, так и акцептора.

Точное измерение резонансного переноса энергии флуоресценции в микроскопе требует компенсации всех потенциальных источников ошибок. Был разработан простой метод коррекции обнаружения донорной флуоресценции с помощью фильтра эмиссии акцептора и флуоресценции акцептора с фильтром эмиссии донора (из-за кроссовера или спектрального просвечивания).Метод также корректирует зависимость FRET от концентраций донорных и акцепторных флуорофоров. Стратегия измерения, которая требует минимум спектральной информации, использует комбинацию из трех наборов фильтров и может быть легко реализована. Наборы донорных, FRET и акцепторных фильтров предназначены для выделения и максимизации трех специфических сигналов: донорной флуоресценции, акцепторной флуоресценции, относящейся к FRET, и непосредственно возбужденной акцепторной флуоресценции, соответственно. На практике три разных образца, содержащие только донор, только акцептор, и донор, и акцептор, исследуются с каждым из трех наборов фильтров, и полученные данные обрабатываются арифметически для корректировки кроссовера и неконтролируемых изменений концентраций донор-акцептор.

На Рисунке 9 представлены схематические иллюстрации кроссовера (спектральное просачивание) и перекрестных помех фильтра, двух важных проблем, которые необходимо преодолеть, чтобы получить количественные результаты в экспериментах по флуоресцентному резонансному переносу энергии. Кроссовер или просачивание проявляется в перекрытии спектра излучения донорной флуоресценции с полосой пропускания интерференционного фильтра излучения акцептора на рисунке 9, в результате чего сигнал излучения донора (нежелательные длины волн) проходит через фильтр излучения.Напротив, перекрестные помехи фильтра описывают минимальный уровень затухания (блокировки) в определенном диапазоне двух фильтров, установленных вместе последовательно, и вызывают беспокойство при согласовании фильтров возбуждения и излучения для наборов флуоресценции. Дихроматические зеркала часто включают в оценку перекрестных помех комбинаций флуоресцентных фильтров. Хотя два эмиссионных фильтра редко устанавливаются на световом пути одновременно, спектры объединены на рисунке 9, чтобы одновременно проиллюстрировать обе концепции.Обратите внимание, что два спектра фильтра (синяя и красная кривые) представляют коэффициент пропускания света интерференционными фильтрами, тогда как кривая излучения донора (зеленый) представляет собой график зависимости интенсивности от длины волны.

Дополнительные факторы, которые потенциально могут привести к значительным ошибкам, также требуют исправления при использовании методов измерения FRET в установившемся режиме. Кроме того, желателен тщательный контроль концентрации донорного и акцепторного флуорофора. Определения концентрации флуорофора можно частично избежать за счет применения измерений флуоресценции с временным разрешением , которые обеспечивают метод получения среднего времени жизни без точного знания концентраций доноров.Метод позволяет количественно определять расстояние разделения донор-акцептор и основан на измерениях времени жизни донора в присутствии и в отсутствие акцептора. Измерение спада интенсивности флуоресценции как функции времени проясняет динамику излучения молекулы в возбужденном состоянии, и, следовательно, может быть получена более подробная информация о природе донорно-акцепторного взаимодействия. Графические графики спада интенсивности иллюстрируют усредненные по времени детали процесса затухания флуоресценции (см. Рис. 10 (а)), которые не разрешаются при использовании методов устойчивого состояния.Измерения, показывающие одно и то же значение средней продолжительности жизни, когда они записываются как интенсивность в установившемся режиме, нормированная на поглощение, могут соответствовать существенно разным формам кривых затухания на графиках данных с временным разрешением, указывая на различия в участвующих межмолекулярных процессах.

Время жизни флуоресценции ( τ ) флуорофора — это характерное время, в течение которого молекула находится в возбужденном состоянии перед возвращением в основное состояние. Представляя затухание флуоресценции в упрощенной единственной экспоненциальной форме после короткого импульса возбуждающего света, интенсивность флуоресценции как функция времени ( t ) определяется уравнением:

I (t) = I0 exp (-t / τ )

, где I (0) — начальная интенсивность излучения флуоресценции сразу после импульса возбуждающего света, а I (t) — интенсивность флуоресценции, измеренная в момент времени t .Время жизни флуоресценции ( τ ) определяется как время, необходимое для уменьшения интенсивности до 1 / e от ее начального значения (приблизительно 37 процентов от I (0) ; Рисунок 10 (a)), и составляет величина, обратная константе скорости затухания флуоресценции из возбужденного состояния в основное.

Основным общим преимуществом измерений FRET с временным разрешением по сравнению с установившимся режимом является то, что расстояние разделения донора и акцептора может быть нанесено на карту с большей количественной точностью.Частично это происходит из-за того, что время жизни флуоресценции не зависит от локальной интенсивности или концентрации и в значительной степени не зависит от фотообесцвечивания флуорофоров. Однако времена жизни флуоресценции очень чувствительны к среде флуорофора, и даже молекулы со сходными спектрами могут проявлять разные времена жизни в разных условиях окружающей среды. Поскольку рассеяние не влияет на время жизни флуорофора, измерения изменения времени жизни могут предоставить информацию, которая конкретно связана с локальными молекулярными процессами.

Срок службы флуорофора может быть изменен множеством переменных в локальном микроокружении, включая такие факторы, как гидрофобность, концентрация кислорода, ионная сила других компонентов среды, связывание с макромолекулами и близость к молекулам акцептора, которые могут истощать возбужденное состояние. состояние за счет резонансной передачи энергии. Значительным практическим преимуществом является то, что измерения времени жизни могут служить абсолютными индикаторами молекулярных взаимодействий и не зависят от концентрации флуорофора.

Два общих метода, обычно используемых для измерения времени жизни флуоресценции, классифицируются как во временной области ( импульсный , см. Рисунок 10 (а)) и в частотной области (также называемый с фазовым разрешением ; рисунок 10 (б)) методы. При измерении срока службы во временной области используются источники света с импульсным возбуждением, а время жизни флуоресценции получают путем прямого измерения сигнала излучения или регистрации с помощью счета фотонов. Подход в частотной области использует синусоидальную модуляцию источника возбуждающего света (полученную из импульсных или модулированных лазерных систем), а время жизни определяется по фазовому сдвигу и глубине демодуляции сигнала флуоресцентного излучения.Каждый из этих подходов к визуализации времени жизни флуоресценции имеет определенные преимущества и недостатки, и оба широко применяются в традиционной широкопольной, конфокальной и многофотонной микроскопии.

На рисунке 10 показаны схематические диаграммы, представляющие методы временной и частотной области для определения времени жизни флуоресценции. В подходе во временной области (рис. 10 (а)) образец возбуждается коротким импульсом лазерного света, длительность которого намного короче, чем время жизни возбужденных частиц, и измеряется экспоненциальный профиль затухания как функция времени.Затухание флуоресценции обычно является моноэкспоненциальной функцией для одного флуорофора, но может иметь гораздо более сложный характер, если возбужденное состояние имеет многочисленные пути релаксации, доступные в окружающей среде. Синусоидально модулированный свет от лазера непрерывного действия, соединенного с акустооптическим модулятором, используется для возбуждения флуорофора в экспериментах в частотной области (рис. 10 (b)). Результирующее флуоресцентное излучение модулируется синусоидально на той же частоте, что и возбуждение, но сопровождается фазовым сдвигом и уменьшением глубины модуляции.В случае однократного экспоненциального затухания время жизни флуоресценции можно рассчитать, определив либо степень фазового сдвига ( φ ), либо коэффициент модуляции ( M ), используя уравнения, представленные на рисунке 10 (b). Если два значения идентичны, затухание флуоресценции действительно состоит из одной экспоненциальной функции. Когда присутствует более одного флуоресцентного вещества (или один флуорофор находится в сложной среде), фазовый сдвиг и время жизни модуляции следует оценивать в широком диапазоне частот.

Метод измерения времени жизни флуоресценции во временной области в основном основан на подсчете одиночных фотонов и требует системы детектирования с достаточным временным разрешением для сбора почти 100 процентов фотонов, генерируемых каждым импульсом возбуждения. Хотя методы с фазовым разрешением относительно менее требовательны в исполнении, они, как правило, не так чувствительны, как метод подсчета фотонов. Когда фазовая модуляция используется для разрешения сложных времен жизни мультифлуорофоров, длительное время воздействия повреждающего возбуждающего освещения может оказаться чрезмерным для некоторых образцов, а также может не обеспечить достаточного временного разрешения для процессов с живыми клетками.Предпочтительный метод зависит как от информации, необходимой для исследования, так и от типа исследуемого образца.

Измерения времени жизни флуоресценции оказались чувствительным индикатором FRET и имеют особые преимущества при исследованиях живых клеток из-за независимости измерений времени жизни от таких факторов, как концентрация и длина светового пути, которые трудно контролировать в живых образцах. Основное преимущество выполнения FRET-исследований с помощью измерения времени жизни флуоресценции заключается в том, что можно различать перенос энергии даже между донорно-акцепторными парами с аналогичными спектрами излучения.Когда время жизни флуоресценции измеряется напрямую (в отличие от использования значений в установившемся состоянии), определение FRET возможно без фотодеструкции донорных или акцепторных флуорофоров. Поскольку FRET уменьшает время жизни флуоресценции донорной молекулы за счет передачи энергии акцептору, прямое сравнение времени жизни донора в присутствии акцептора ( τ (DA) ) с временем жизни в отсутствие акцептора ( τ ( D) ), позволяет вычислять значение эффективности FRET ( E (T) ) для каждого пикселя изображения.

В зависимости от методики измерения времени жизни флуоресценции требуют, чтобы образец подвергался воздействию либо высокочастотных повторяющихся импульсов возбуждающего света, либо непрерывного синусоидально модулированного света. В исследованиях с живыми клетками всегда необходимо оценивать эффект интенсивного освещения. Независимо от метода, эталонное время жизни донора без акцептора должно быть определено в экспериментальных условиях, идентичных условиям измерения донор-акцептор.Одним из способов достижения этого с одним образцом является измерение времени жизни только донора после фотообесцвечивания акцептора после эксперимента по передаче энергии.

Выводы

В биологических исследованиях наиболее распространенными применениями флуоресцентного резонансного переноса энергии являются измерение расстояний между двумя участками макромолекулы (обычно белка или нуклеиновой кислоты) или исследование взаимодействия in vivo между биомолекулярными объектами.Белки могут быть помечены синтетическими флуорохромами или иммунофлуоресцентными флуорофорами, которые служат донором и акцептором, но достижения в генетике флуоресцентных белков теперь позволяют исследователям маркировать определенные целевые белки множеством биологических флуорофоров, имеющих разные спектральные характеристики. Во многих случаях аминокислота триптофан используется в качестве внутреннего донорного флуорофора, который может быть связан с любым количеством внешних зондов, выступающих в качестве акцептора.

Если макромолекулы помечены одним донором и акцептором, а расстояние между двумя флуорохромами не изменяется в течение времени жизни возбужденного состояния донора, то расстояние между зондами можно определить по эффективности передачи энергии в установившемся состоянии. измерения, как описано выше.В случаях, когда расстояние между донором и акцептором колеблется вокруг кривой распределения, например, белковые сборки, мембраны, одноцепочечные нуклеиновые кислоты или развернутые белки (см. Сценарии, представленные на рисунке 11), FRET все еще можно использовать для изучения явлений, но предпочтительны измерения срока службы с временным разрешением. Некоторые биологические применения, которые попадают в оба случая, показаны на рисунке 11, включая конформационные изменения, диссоциацию или гидролиз, слияние мембраноподобных липидных везикул и взаимодействия лиганд-рецептор.

Хотя для измерения резонансного переноса энергии флуоресценции в оптическом микроскопе доступны различные методы, ни один из них не лишен недостатков. Некоторые методы требуют более сложных и дорогостоящих инструментов, в то время как другие основаны на предположениях, которые необходимо тщательно проверять. Некоторые подходы подходят для фиксированных образцов, но не могут применяться к системам живых клеток, в то время как другие методы должны включать значительные корректирующие вычисления или алгоритмы анализа данных.Однако несомненно, что FRET-анализ показывает большие перспективы для дальнейшего развития полезности и объема биологических приложений. В последние годы произошли драматические улучшения в инструментарии, особенно в отношении методов с временным разрешением.

Измерения времени жизни флуоресценции, которые раньше выполнялись крайне сложно, теперь поддерживаются зрелыми пикосекундными и наносекундными технологиями. Успехи в разработке флуоресцентных зондов позволили получить более мелкие и более стабильные молекулы с новыми механизмами прикрепления к биологическим мишеням.Были также разработаны флуорофоры с широким диапазоном времени жизни в собственном возбужденном состоянии, и значительные усилия прилагаются к развитию большего разнообразия генетических вариаций флуоресцентных белков. Совершенно новые классы флуоресцентных материалов, многие из которых меньше, чем предыдущие флуорофоры, и позволяют оценивать молекулярные взаимодействия на меньших расстояниях разделения, обещают повысить универсальность мечения и привести к новым применениям метода FRET.

Соавторы

Брайан Херман и Виктория Э.Centonze Frohlich — Департамент клеточной и структурной биологии, Научный центр здравоохранения Техасского университета, 7703 Floyd Curl Drive, San Antonio, Texas 78229.

Joseph R. Lakowicz — Центр флуоресцентной спектроскопии, Департамент биохимии и молекулярной биологии, Университет Мэриленда и Институт биотехнологии Университета Мэриленда (UMBI), 725 West Lombard Street, Baltimore, Maryland 21201.

Thomas J. Fellers and Michael W.Дэвидсон — Национальная лаборатория сильного магнитного поля, 1800 г. Ист. Пол Дирак, доктор, Университет штата Флорида, Таллахасси, Флорида, 32310.

Использование FLIM-FRET для измерения конформационных изменений трансглутаминазы типа 2 в живых клетках

Abstract

Трансглутаминаза типа 2 (TG2) является повсеместно экспрессируемым членом семейства трансглутаминаз, способным опосредовать реакцию трансамидирования между различными белковыми субстратами. TG2 также играет уникальную роль в качестве G-белка с активностью GTPase.В ответ на связывание GDP / GTP и увеличение уровней внутриклеточного кальция TG2 может претерпевать большие конформационные изменения, которые взаимно модулируют ферментативную активность TG2. Мы создали биосенсор TG2, который позволяет количественно оценивать конформационные изменения TG2 в живых клетках с использованием резонансного переноса энергии Ферстера (FRET), измеренного с помощью микроскопии визуализации времени жизни флуоресценции (FLIM). Количественная оценка эффективности FRET с помощью этого биосенсора обеспечивает надежный анализ для быстрого измерения влияния клеточного стресса, изменений уровня кальция, точечных мутаций и химических ингибиторов на конформацию и локализацию TG2 в живых клетках.Биосенсор TG2 FRET был подтвержден с использованием установленных точечных мутантов TG2, а также событий клеточного стресса, которые, как известно, повышают уровни внутриклеточного кальция. Мы демонстрируем на живых клетках, что ингибиторы активности трансамидирования TG2 могут по-разному влиять на конформацию фермента. Необратимый ингибитор TG2, NC9, заставляет фермент перейти в открытую конформацию, тогда как обратимый ингибитор CP4d улавливает TG2 в закрытой конформации. Таким образом, этот биосенсор обеспечивает новое понимание механизма действия двух ингибиторов TG2 и определяет два новых класса, основанных на способности изменять конформацию TG2 в дополнение к ингибированию активности трансамидирования.Будущие применения этого биосенсора могут заключаться в обнаружении небольших молекул, которые специфически изменяют конформацию TG2, чтобы влиять на GDP / GTP или связывание кальция.

Образец цитирования: Caron NS, Munsie LN, Keillor JW, Truant R (2012) Использование FLIM-FRET для измерения конформационных изменений трансглутаминазы типа 2 в живых клетках. PLoS ONE 7 (8): e44159. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0044159

Редактор: Стефан Штрак, Университет Айовы, Соединенные Штаты Америки

Поступила: 27.04.2012; Принято к печати: 30 июля 2012 г .; Опубликовано: 31 августа 2012 г.

Авторские права: © Caron et al.Это статья в открытом доступе, распространяемая в соответствии с условиями лицензии Creative Commons Attribution License, которая разрешает неограниченное использование, распространение и воспроизведение на любом носителе при условии указания автора и источника.

Финансирование: Работа финансировалась Канадским институтом исследований в области здравоохранения, грант MOP-16574, поддержка RT от CHDI Inc. (Лос-Анджелес) и Фонда Крембила. Финансирующие организации не играли никакой роли в дизайне исследования, сборе и анализе данных, принятии решения о публикации или подготовке рукописи.

Конкурирующие интересы: Авторы заявили, что никаких конкурирующих интересов не существует.

Введение

Трансглутаминаза типа 2 (TG2; EC 2.3.2.13) представляет собой многофункциональный фермент, способный катализировать несколько кальций-зависимых реакций, включая реакцию трансамидирования (ковалентное поперечное сшивание) между γ-карбоксамидной группой связанного пептида. глутамин и различные аминовые субстраты [1] как во внутри-, так и во внеклеточном контексте [2]. Альтернативно, TG2 может также гидролизовать GTP, где он действует как G-белок, опосредующий сигнальный каскад фосфолипазы C [3], [4].Эти клеточные роли TG2 реципрокно регулируются большими конформационными изменениями [5], [6]. Кристаллические структуры TG2 были расшифрованы, что указывает на то, что TG2, связанный с GDP / GTP, принимает «закрытую» конформацию, которая каталитически неактивна в качестве сшивающего фермента [6]. Напротив, дополнительная кристаллическая структура показывает, что пептидный ингибитор, имитирующий субстрат, связанный с TG2, расширяет фермент до «открытой» конформации [6]. Это говорит о том, что открытая конформация представляет собой ферментативно активную версию фермента, но до настоящего времени не было растворено ни одного кристалла с ионами кальция и субстратом, связанным с TG2.В нормальных физиологических условиях уровни внутриклеточного кальция низкие, и большая часть популяции TG2 связана с гуанозиновыми нуклеотидами в закрытой конформации [7]. Однако в условиях специфического клеточного стресса уровни кальция резко повышаются, вызывая сдвиг в популяции TG2 в сторону его открытой и ферментативно активной конформации сшивания.

Несмотря на широту информации, которую можно извлечь из создания кристаллических структур, эта работа требует много времени и предполагает, что очищенный белок, который упаковывается в кристаллические массивы in vitro , является представителем конформации белка in vivo .В качестве альтернативного метода мы создали тройное слияние человеческого TG2 между двумя флуоресцентными зондами, чтобы измерить конформационные различия между ферментативными ролями TG2 в живых клетках с использованием резонансного переноса энергии Ферстера (FRET). FRET — это хорошо зарекомендовавший себя метод измерения молекулярных взаимодействий, а также конформационных изменений в живых клетках. FRET включает безызлучательный перенос энергии между донорной и акцепторной молекулами [8]. FRET требует, чтобы донор и молекула акцептора находились в непосредственной пространственной близости друг от друга, где радиус Ферстера пары FRET означает расстояние, на котором эффективность передачи энергии составляет 50% (∼8 нанометров для mCer и eYFP). [8] — [10].Этот интервал в 8 нм представляет собой расстояние между ядрами флуорофоров, однако, когда учитываются диаметры внешней валентной оболочки флуоресцентных белков, эта близость по существу представляет собой прямое белок-белковое взаимодействие. Другое требование FRET — это высокая степень перекрытия между спектром излучения молекулы-донора и спектром возбуждения молекулы-акцептора. Наиболее количественный метод измерения FRET в живых клетках — использование флуоресцентной микроскопии для визуализации времени жизни (FLIM) [11].Время жизни флуоресценции относится к периоду времени, в течение которого флуоресцентная молекула остается в возбужденном состоянии до возвращения в основное состояние и испускания фотона [12]. На время жизни флуорофора могут влиять биохимические и биофизические свойства его микроокружения, где FRET приводит к уменьшению времени жизни флуоресценции донорной молекулы, которое можно точно измерить [13]. В отличие от других спектральных методов измерения FRET, таких как FRET сенсибилизированного излучения (SE-FRET) [14], возможность измерения времени жизни флуоресценции флуоресцентных белков, экспрессируемых в живых клетках, в меньшей степени зависит от относительных концентраций и интенсивностей зонда, фотообесцвечивания как а также спектральное растекание [13], [15].Точность измерения FRET дополнительно повышается за счет этого генетически закодированного тройного слияния, которое обеспечивает относительную концентрацию донорно-акцепторного флуорофора 1-1. Для измерения времени жизни во временной области (TD-FLIM) флуоресцентные образцы возбуждаются фемтосекундным импульсным лазером, соединенным с системой коррелированного по времени счета одиночных фотонов (TCSPC) [16]. Используя FLIM для измерения FRET, мы создали биосенсор, который представляет собой новый инструмент для количественного измерения конформаций TG2 в контексте живых клеток.Этот датчик обеспечивает анализ для быстрого измерения влияния клеточных стрессов, точечных мутаций и химических ингибиторов на конформацию TG2. Используя этот анализ, мы раскрыли новые механистические представления об активности ингибиторов TG2 NC9 и Cp4d и разработали новый способ классификации ингибиторов TG2 на основе их способности влиять на конформацию белка.

TG2 был связан с множеством заболеваний человека, включая воспалительные, аутоиммунные и нейродегенеративные заболевания, однако патологическая роль TG2 в этих условиях остается неуловимой.Большая часть ранних работ, проделанных с TG2, была сосредоточена на его аберрантном перекрестном связывании субстратов как на причине патологии; однако растущие данные свидетельствуют о том, что субклеточная локализация и конформация TG2 также являются критическими в регуляции процессов клеточной гибели. Таким образом, мы считаем, что изучение TG2 in vivo имеет решающее значение для улучшения нашего понимания TG2 и его роли в патологиях множества заболеваний. Этот биосенсор представляет собой универсальный инструмент, способный быстро оценить конформации TG2, одновременно предоставляя дополнительную информацию о субклеточной локализации TG2 в живых клетках.

Результаты

Используя программу молекулярного моделирования PyMol [17] и ранее опубликованные кристаллические структуры TG2 (PDB ID: 2Q3Z) [6], мы измерили расстояния между остатками амино- и карбоксильных концов TG2 в трехмерном пространстве для обоих его известных конформаций. Переход TG2 из закрытой в открытую конформацию приводит к сдвигу расстояния между его концами от менее 10 нм до примерно 150 нм. Мы предположили, что эти расстояния могут быть использованы для обнаружения FRET и могут быть использованы для создания конформационного биосенсора для анализа как конформации, так и клеточной локализации TG2 в живых клетках.Мы слили донорный флуоресцентный белок mCerulean и флуорофор акцепторного желтого флуоресцентного белка (eYFP) с амино- и карбоксильным концом TG2, соответственно, и протестировали эту конструкцию в различных условиях в живых клетках с использованием TD-FLIM. Мономерный церулеан был выбран в качестве донора для FRET, поскольку этот вариант CFP имеет моноэкспоненциальный спад времени жизни и имеет значительное спектральное перекрытие с eYFP, что делает эту пару оптимальной для FLIM-FRET [10]. Как продемонстрировала наша модель, когда TG2 связан с гуанозиновыми нуклеотидами в своей закрытой конформации, мы могли бы предсказать устойчивое увеличение эффективности FRET, коррелирующее с уменьшением времени жизни донора (Рисунок 1A).В качестве альтернативы, когда молекула субстрата и / или кальций связаны с TG2 в открытой конформации, флуорофоры больше не находятся в непосредственной пространственной близости, и, таким образом, мы можем прогнозировать снижение эффективности FRET (Рисунок 1B).

Рис. 1. Конформационный датчик FRET трансглутаминазы типа 2 (TG2).

(A и B) Спекулятивные модели сенсора FRET mCerulean-TG2-eYFP в связанной с GDP / GTP закрытой конформации (A) и сенсора mCerulean-TG2-eYFP в открытой конформации Ca 2+ и субстратом (B ).(C) Образец FLIM-изображения mCerulean-TG2 с одним отрицательным контролем eYFP. Интенсивность, изображения времени жизни, взвешенные по интенсивности, и гистограммы времени жизни показаны для каждой конструкции. Время жизни, показанное на изображениях времени жизни, взвешенных по интенсивности, окрашено в псевдо-цвет с использованием радужной LUT, которая соответствует шкале времени жизни, представленной на гистограмме. Пунктирные белые линии на гистограммах представляют приблизительный срок службы с наибольшим количеством пикселей. (D) Образец FLIM-изображения mCerulean-TG2, коэкспрессированного с TG2-eYFP, отрицательным контролем для межмолекулярного FRET.(E) Образец FLIM-изображения конформационного датчика FRET mCerulean-TG2-eYFP. (F) Количественные данные FLIM-FRET показаны как процентная эффективность FRET для отрицательных контролей TG2, а также датчика FRET mCerulean-TG2-eYFP. (G) Количественная оценка влияния на процентную эффективность FRET добавления 4 глицинов в качестве линкеров между флуорофором и TG2. Прямоугольники охватывают доверительные интервалы от 25% до 75%, линия внутри указывает медианное значение данных, а усы представляют собой доверительные интервалы от 5% до 95%.* р <0,001. N = 15 для 6 повторностей. Масштабная шкала соответствует 10 мкм.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0044159.g001

Перед тестированием нашего конформационного сенсора на живых клетках ST Hdh мы определили, что слияние mCerulean-TG2 в отсутствие или в присутствии акцептора (с использованием Один только eYFP, рис. 1C) имел время жизни приблизительно 2,8 нс, что согласуется с естественным временем жизни mCerulean, измеренным другими [10]. Как и предполагалось, с помощью нашего датчика mCerulean-TG2-eYFP мы отметили значительное уменьшение срока службы донора (представленное псевдоцветами от оранжевого до красного на фотонно-взвешенном изображении времени жизни и сдвиг влево пика гистограммы времени жизни) (рисунок 1E и 1F).Это можно интерпретировать как популяцию TG2 в клетке, принявшую закрытую конформацию. Эти результаты согласуются с биохимическими данными, которые предполагают, что большая часть TG2 в клетках в условиях устойчивого состояния ведет себя как GTPase / G-белок [7]. Чтобы установить, что наблюдаемое уменьшение времени жизни было связано с внутримолекулярным FRET между отдельными молекулами TG2, а не с межмолекулярным FRET как артефактом сверхэкспрессии или агрегации белков, мы совместно экспрессировали конструкции mCerulean-TG2 и TG2-eYFP вместе при раздельной экспрессии плазмиды и не наблюдали изменений в продолжительности жизни по сравнению с контролем только mCerulean-TG2 + eYFP (рис. 1D и 1F).Несмотря на простоту этого сенсора, были протестированы глициновые линкеры между флуорофором и TG2, чтобы оптимизировать эффективность передачи энергии между зондами, а также увеличить динамический диапазон для количественной оценки (рис. 1G). Мы обнаружили, что добавление 4 глицинов в качестве линкеров как к амино, так и к карбоксильным концам обеспечивает оптимальные значения эффективности FRET. Это, вероятно, было достигнуто меньшим пространственным препятствием для динамики белка TG2 со стороны флуорофоров, а также лучшим потенциалом для выравнивания дипольных моментов флуорофора в трехмерном пространстве.

Затем мы хотели проанализировать влияние мутаций замены в критических остатках на конформацию TG2. Мутация аргинина 580 человеческого TG2 в аланин (R580A) отменяет все связывание гуанозиновых нуклеотидов [18], однако мало что известно о влиянии этой мутации на конформацию TG2. Эта мутация R580A вызывает значительное снижение процентной эффективности FRET (p <0,001) по сравнению с биосенсором TG2 дикого типа (WT) (рис. 2A). Это говорит о том, что, когда TG2 не может связываться с GDP / GTP, повышенное количество TG2 в клетке может быть обнаружено в открытой конформации.Триптофан 241 - это консервативный остаток в человеческом TG2, который имеет решающее значение для его трансамидирующей активности [19]. Мутация этого остатка в аланин (W241A) отменяет его трансамидирующую активность, сохраняя при этом способность фермента связывать GDP / GTP [19]. Как и ожидалось, эта мутация мало повлияла на конформацию популяции TG2 по сравнению с WT (рис. 2А). Вероятно, это связано со способностью этого мутанта TG2 все еще связывать гуанозиновые нуклеотиды.

Рис. 2. Точечные мутации и клеточные стрессы влияют на конформацию TG2 в живых клетках.

(A) Количественные данные FLIM-FRET показаны как процентная эффективность FRET для сенсора FRET mCerulean-TG2-eYFP, нечувствительного к GDP / GTP мутанта R580A и каталитически неактивного мутанта W241A. Черная линия представляет средние значения, прямоугольники охватывают доверительные интервалы 25% и 75%, а усы указывают доверительные интервалы от 5% до 95%. * р <0,001. N = 15 для 4-х повторностей. (B – D) Типичные изображения FLIM данных в (A). (E) Количественные данные FLIM-FRET показаны как процентная эффективность FRET для датчика FRET mCerulean-TG2-eYFP или датчика после 30-минутного теплового шока (42.5 ° C) или обработка ионофором Ca 2+ A23187 в течение 10 минут. (F, G) Репрезентативные изображения данных FLIM в (E). * р <0,001. N> 10 для 4 повторов. Масштабная шкала соответствует 10 мкм.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0044159.g002

Для дальнейшей проверки этого сенсора TG2 мы проверили влияние различных нагрузок на конформацию TG2. Тепловой шок — это глобальный клеточный стресс, который активирует многие шапероны и сигнальные каскады, участвующие в ответе на тепловой шок [20].Тепловой шок вызывает снижение клеточных уровней АТФ [21] и повышение уровней внутриклеточного кальция [22], что, как мы предположили, могло бы сдвинуть внутриклеточную популяцию TG2 в сторону открытой конформации. Наши данные показали, что 30-минутная обработка тепловым шоком (при 42,5 ° C) вызывает значительное (p <0,001) снижение общей процентной эффективности FRET в клетках, экспрессирующих датчик TG2 (рис. 2B). Все контроли также выполнялись в одинаковых условиях, чтобы гарантировать, что это снижение эффективности FRET не было вызвано артефактом тепловой денатурирования сенсорных флуоресцентных белков.Мы также протестировали A23187 (кальцимицин), ионофор, который делает плазматическую мембрану клеток проницаемой для двухвалентных ионов, быстро увеличивая внутриклеточные уровни кальция [23]. Обработка соединением A23187 в течение 10 минут имела такой же эффект на конформацию TG2, что и обработка тепловым шоком (фиг. 2B), демонстрируя, что TG2 принимает открытую конформацию в живых клетках при воздействии высоких концентраций кальция.

Наконец, мы хотели протестировать эффекты различных ингибиторов трансамидирования на конформацию TG2, чтобы получить более полное представление об их механизме действия in vivo. NC9 (α-N-карбобензилокси-γ-N-акрилоил-L-лизин (2- (2-дансиламиноэтокси) этокси) этанамид) является необратимым ингибитором семейства трансглутаминаз, который реагирует с активным центром фермента и имеет аналогичный механизм действия, как синтетический ингибитор пентапептида, используемый для создания кристаллической структуры открытой конформации TG2 [6]. Таким образом, было высказано предположение, что NC9 стабилизирует белок в открытой конформации [24], [25]. Чтобы проверить эту гипотезу, клетки, экспрессирующие сенсор TG2 FRET, обрабатывали соединением NC9 в течение 16 часов.Мы измерили значительное снижение процента эффективности FRET (рис. 3A и 3C; p <0,001) по сравнению с необработанными клетками. Чтобы проверить конформационную кинетику этого ингибирования, мы обработали клетки ST Hdh , экспрессирующие сенсор TG2, 10 мкМ NC9 и измерили процентную эффективность FRET временно в течение 24 часов (рис. 3C). Мы отметили, что NC9 проявил свои наиболее значительные эффекты после 1 часа лечения.

Рисунок 3. Ингибиторы TG2 по-разному влияют на конформацию TG2.

(A) Количественные данные FLIM-FRET показаны как процентная эффективность FRET для датчика FRET mCerulean-TG2-eYFP после 16-часовой обработки либо необратимым ингибитором TG2, NC9, либо обратимым ингибитором TG2, CP4d. (B) Процентная эффективность графика FRET, созданного после обработки сенсора TG2 5 увеличивающимися концентрациями CP4d. (C) Процентная эффективность графика FRET для датчика TG2 после обработки 10 мкМ NC9 для 5 различных временных точек от 0 до 24 часов. Черная линия представляет средние значения, прямоугольники охватывают доверительные интервалы 25% и 75%, а усы указывают доверительные интервалы от 5% до 95%.* p <0,001, ** p <0,05 и N.S = не значимо. N> 10 для 4 повторов.

https://doi.org/10.1371/journal.pone.0044159.g003

CP4d (( E ) -1- (1- (4-нитробензил) -1H-1,2,3-триазол-4- ил) -3- (4-нитрофенил) проп-2-ен-1-он) является конкурентным, обратимым и селективным ингибитором TG2 без известного влияния на конформацию TG2 в клетках [26]. В клетках, экспрессирующих сенсор TG2, мы отметили, что обработка CP4d вызвала увеличение процента эффективности FRET по сравнению с отсутствием обработки, предполагая, что этот ингибитор поддерживает TG2 в закрытой конформации для предотвращения активности трансамидирования.Обработка клеток диапазоном концентраций CP4d в диапазоне от 500 нМ до 10 мкМ (фиг. 3B) вызвала прогрессирующий доза-ответный эффект этого ингибитора на конформацию TG2 с увеличением концентрации CP4d.

Обсуждение

Различные активности TG2 были непосредственно вовлечены в прогрессирование целиакии, артросклероза, диабета, рака, глаукомы и образования катаракты [27]. Кроме того, TG2 играет роль во многих нейродегенеративных заболеваниях, включая болезнь Хантингтона (HD ) [28], болезнь Паркинсона (БП), а также болезнь Альцгеймера (БА) [29], [30].Исследования головного мозга пациентов показали, что уровни экспрессии и трансамидирующая активность TG2 сильно повышены при этих заболеваниях, где было высказано предположение, что гибель клеток может быть вызвана аберрантным перекрестным связыванием субстратов [30]. Роль TG2 в процессе гибели клеток зависит от типа клетки, стрессора, его субклеточной локализации, его ферментативной роли и его конформации [24]. Используя FLIM-FRET, биосенсор TG2 FRET не только обеспечивает измерение конформации и ферментативной роли TG2, но также обеспечивает разрешение субклеточной локализации TG2 в живых клетках.Следовательно, этот анализ быстро предоставляет несколько уровней информации относительно TG2 и может быть проведен в физиологических условиях в живых клетках. Кроме того, этот сенсор TG2 представляет собой инструмент для определения того, влияют ли специфические ингибиторы как на конформацию, так и на локализацию фермента в стационарных условиях и в условиях клеточного стресса, и могут ли они поддаваться экспрессии трансгена в модели на мышах.

Хотя здесь мы использовали FLIM для обнаружения изменений FRET, поскольку и донор, и акцептор находятся на одной молекуле в соотношении 1∶1, обнаружение и количественное определение FRET менее дорогостоящими методами, поддающимися высокому содержанию или высокопроизводительному скринингу, т.е.е. сенсибилизированное излучение [14] или акцепторное фотообесцвечивание FRET [31]. Также возможно отобразить временные изменения FRET в живых клетках с помощью логометрической визуализации с SE-FRET.

Используя этот анализ, мы смогли сравнить эффекты ингибиторов NC9 и Cp4d как по зависимости от дозы, так и по времени реакции в живых клетках, экспрессирующих биосенсор TG2 FRET. Как и предсказывали оригинальные авторы работы, описывающей NC9 [18], [25], этот ингибитор, как было показано, заставляет TG2 открываться и стабилизирует его в этой конформации [18].Напротив, обратимый ингибитор Cp4d TG2, как было показано, способствует закрытой конформации биосенсора TG2 [26]. Это предполагает, что этот ингибитор может все еще поддерживать связывание GTP в закрытой конформации, при этом полностью ингибируя активность трансамидирования TG2.

Различная активность этих ингибиторов TG2 позволяет предположить, что они могут быть разделены на три потенциальных класса: класс I, который может способствовать закрытой конформации фермента при связывании; класс II, который может заблокировать фермент в открытой конформации; и третий класс, класс III, который вообще не обладает какими-либо конформационными эффектами, но все же может ингибировать активность трансамидирования TG2.Следовательно, в зависимости от контекста заболевания, терапевтические средства, направленные на ингибирование сшивающей активности TG2, могут быть разработаны с учетом конформации фермента, чтобы не влиять на другие потенциально полезные биологические функции TG2, такие как кальций и / или GTP. привязка. И наоборот, этот биосенсор можно использовать для скрининга ингибиторов новых молекул, которые специфически нацелены на конформацию TG2, следовательно, на активность связывания кальция или GTP, если они имеют отношение к изучаемой патологии заболевания.

Материалы и методы

Заявление об этике: Полная информация об утверждении исследования Комитетом по биобезопасности Университета Макмастера.

Культура ткани: Иммортализованные клетки полосатого тела мыши ST Hdh Q7 / Q7 клетки получали от нормальных мышей дикого типа и выращивали, как описано ранее (Atwal et al., 2007). Клетки были любезным подарком от доктора Марси Макдональд (MGH / Гарвард) и были ранее охарактеризованы [32].

Трансфекция клеток

: ST Hdh Q7 / Q7 клетки трансфицировали с использованием реагента для трансфекции TurboFect in vitro (Fermentas) в течение 24–36 часов перед визуализацией, как описано ранее [28].

Плазмидные конструкции

: Конструкции TG2 были созданы с использованием ПЦР на кДНК TG2 человека (щедрый подарок от G.V.W. Johnson) с прямым праймером GATCAGATCTGGTGGCGGAGGGATGGCCGAGGAGCTGGTCTTAG с сайтом рестрикции BglIIAC65 и сайтом рестрикции BglIIACGACGACCGCCGCCCCCGCCGCCGCCGCCGCCGCCCGCCGCCGCCCCCGCCGCCGCCCCCGCCGCCCCCGCCGCC Точечная мутация TG2 R580A была введена с использованием обратной ПЦР на TG2 дикого типа с прямым праймером GCGGACCTCTACCTGGAGAATC и обратным праймером CTCAGCCAGCAGGTAGCTGTTG. Мутация TG2 W241A была введена с использованием обратной ПЦР на TG2 дикого типа с прямым праймером GCGGACAACAACTACGGG и обратным праймером GCGTCCCAGCAGCACACC.Все продукты ПЦР с вставкой клонировали в модифицированную плазмиду mCerulean-C1 со вставкой eYFP, клонированной в сайты BamHI и XbaI на противоположном конце сайта множественного клонирования (MCS).

Обработка ингибитором

TG2: Обработка ингибитором CP4d и NC9 была оставлена ​​на трансфицированных клетках ST Hdh Q7 / Q7 на ~ 14–16 часов перед использованием в экспериментах FLIM-FRET. Активность ингибиторов TG2 (NC9, CP4d) была подтверждена с помощью колориметрического анализа трансглутаминазы in vitro (Sigma Cat # CS1070-1KT) в концентрациях от 500 нМ до 15 мкМ.Этот анализ также использовали для подтверждения трансглутаминазной активности белка mCer-TG2-eYFP, экспрессируемого в клетках ST Hdh , которые обладают небольшой измеряемой эндогенной активностью TG2 или не имеют ее.

Флуоресцентная микроскопия с визуализацией на протяжении всей жизни (FLIM): FLIM выполняли, как описано ранее [28].

FLIM — Анализ ImageJ: Используя подключаемый модуль Becker and Hickl FLIM для ImageJ (с сайта www.macbiophotonics.ca), мы импортировали тау- и фотонные изображения для каждой клетки, подлежащей количественной оценке. Значения на изображениях тау (τ) представляют время жизни флуоресценции донорного флуорофора (mCerulean) в каждом пикселе в пределах изображения, тогда как изображение фотона представляет количество фотонов, собранных в каждом пикселе.Значения на изображении τ были затем установлены так, чтобы отображать только диапазон от 1750 до 3250 пикосекунд, чтобы минимизировать вклад фонового сигнала и автофлуоресценции в каждом изображении в окончательные количественные оценки. Используя инструмент выбора от руки, каждая ячейка затем была полностью обведена на фотонном изображении, чтобы уменьшить экспериментальное смещение, где эта область интереса (ROI) затем была применена к изображению τ для измерения. Измерения средней интенсивности на изображении τ представляют собой среднее время жизни флуоресценции на каждом значении R.О. Эффективность FRET для каждого изображения определялась с использованием уравнения% FRET E = 1 — (среднее время жизни DA / среднее время жизни D), где время жизни DA указывает среднее время жизни слияний mCerulean-TG2 в присутствии указанного акцептора, а время жизни D указывает на общее среднее время жизни только слияний mCerulean-TG2 (без акцептора). Минимум 15 клеток определяли количественно при каждом условии для каждого испытания и затем наносили на график в виде ящичков-усов. Поле представляет собой доверительные интервалы от 25% до 75%, а линия внутри указывает медианное значение данных.Усы представляют собой доверительные интервалы от 5% до 95%, при которых выбросы удалялись, если они выходили за пределы 2 стандартных отклонений от среднего.

Статистический анализ: Весь статистический анализ был выполнен с использованием программного обеспечения SigmaPlot 11.0 (Systat Software Inc.). Для сравнения между двумя группами выполнялись T-тесты Стьюдента, если данные соответствовали предположениям о нормальности. Если данные не проходили тест на нормальность, они анализировались методом Манна – Уитни. Для множественных парных сравнений выполнялся односторонний дисперсионный анализ (ANOVA) с использованием метода Стьюдента-Ньюмана-Кеулса, если данные прошли проверку нормальности распределения.Если данные не соответствовали предположениям о нормальности, то мы выполняли односторонний дисперсионный анализ рангов с использованием теста Тьюки. Для всех количественных оценок FLIM каждая ячейка была представлена ​​как собственный N для этой конструкции / обработки. Таким образом, каждый график блотов с усами был создан с использованием данных одного репрезентативного испытания. Каждое испытание конструкции / лечения повторяли как минимум 3 раза, чтобы убедиться в том, что тенденции между испытаниями согласованы.

Благодарности

Авторы хотели бы поблагодарить проф.Г.В. Джонсон из Университета Рочестера, штат Нью-Йорк, и доктор Дуглас Макдональд из CHDI Inc.

Вклад авторов

Задумал и спроектировал эксперименты: NSC LNM JWK RT. Проведены эксперименты: ННЦ ЛНМ. Проанализированы данные: NSC LNM JWK RT. Предоставленные реагенты / материалы / инструменты анализа: RT JWK. Написал статью: НСК РТ.

Список литературы

  1. 1. Folk JE, Finlayson JS (1977) Сшивка эпсилон- (гамма-глутамил) лизина и каталитическая роль трансглутаминаз.AdvProtein Chem 31: 1–133.
  2. 2. Гриффин М., Касадио Р., Бергамини С.М. (2002) Трансглутаминазы: природные биологические клеи. BiochemJ 368: 377–396.
  3. 3. Chen JS, Mehta K (1999) Тканевая трансглутаминаза: фермент с раздвоением личности. IntJBiochemCell Biol 31: 817–836.
  4. 4. Nakaoka H, ​​Perez DM, Baek KJ, Das T, Husain A и др. (1994) Gh: GTP-связывающий белок с трансглутаминазной активностью и функцией передачи сигналов рецептора. Наука 264: 1593–1596.
  5. 5. Begg GE, Holman SR, Stokes PH, Matthews JM, Graham RM и др. (2006) Мутация критического аргинина в GTP-связывающем сайте трансглутаминазы 2 подавляет активность внутриклеточного перекрестного связывания. JBiol Chem 281: 12603–12609.
  6. 6. Pinkas DM, Strop P, Brunger AT, Khosla C (2007) Трансглутаминаза 2 претерпевает большое конформационное изменение при активации. PLoSBiol 5: e327.
  7. 7. Gundemir S, Johnson GV (2009) Внутриклеточная локализация и конформационное состояние трансглутаминазы 2: последствия для гибели клеток.PLoSOne 4: e6123.
  8. 8. Ван Дер Меер Б.В., Кокер И., Чен SYS (1994) Резонансный перенос энергии: теория и данные. ВЧ.
  9. 9. Rizzo MA, Springer G, Segawa K, Zipfel WR, Piston DW (2006) Оптимизация пар и условий обнаружения для измерения FRET между голубыми и желтыми флуоресцентными белками. MicroscMicroanal 12: 238–254.
  10. 10. Rizzo MA, Springer GH, Granada B, Piston DW (2004) Улучшенный вариант голубого флуоресцентного белка, полезный для FRET.NatBiotechnol 22: 445–449.
  11. 11. Wallrabe H, Periasamy A (2010) Визуализация белковых молекул с использованием FRET и FLIM Microscopy. CurrOpinBiotech 16: 19–27.
  12. 12. Wallrabe H, Periasamy A (2005) Визуализация белковых молекул с использованием микроскопии FRET и FLIM. CurrOpinBiotechnol 16: 19–27.
  13. 13. Чен Ю., Миллс Дж. Д., Периасами А. (2003) Локализация белка в живых клетках и тканях с использованием FRET и FLIM. Дифференциация 71: 528–541.
  14. 14.Majoul I, Straub M, Duden R, Hell SW, Soling HD (2002) Анализ флуоресцентного резонансного переноса энергии белок-белковых взаимодействий в отдельных живых клетках с помощью мультифокальной многофотонной микроскопии. J Biotechnol 82: 267–277.
  15. 15. Alcor D, Calleja V, Larijani B (2009) Выявление передачи сигналов в отдельных клетках с помощью микроскопии с визуализацией времени жизни одно- и двухфотонной флуоресценции. Методы Мол Биол 462: 307–343.
  16. 16. Дункан Р.Р., Бергманн А., Кузен М.А., Аппс Д.К., Шипстон ​​М.Дж. (2004) Многомерная микроскопия для визуализации времени жизни флуоресценции (FLIM) с временным коррелированным подсчетом одиночных фотонов (FLIM) для обнаружения FRET в клетках.JMicrosc 215: 1–12.
  17. 17. ДеЛано В.Л. (2002) Система молекулярной графики PyMOL. Сан-Карлос, Калифорния, США: DeLano Scientific.
  18. 18. Ruan Q, Tucholski J, Gundemir S, Johnson Voll GV (2008) Дифференциальные эффекты мутации R580A на трансамидирование и GTP-связывающую активность трансглутаминазы типа 2 крысы и человека. IntJClinExpMed 1: 248–259.
  19. 19. Мурти С.Н., Иисмаа С., Бегг Г., Фрейманн Д.М., Грэм Р.М. и др. (2002) Консервированный триптофан в основном домене трансглутаминазы необходим для каталитической активности.ProcNatlAcadSciUSA 99: 2738–2742.
  20. 20. Sorger PK (1991) Фактор теплового шока и реакция на тепловой шок. Ячейка 65: 363–366.
  21. 21. Lunec J, Cresswell SR (1983) Термостойкость, вызванная нагревом, выражается в энергетическом метаболизме клеток млекопитающих. РадиатРес 93: 588–597.
  22. 22. Drummond IA, McClure SA, Poenie M, Tsien RY, Steinhardt RA (1986) Большие изменения внутриклеточного pH и кальция, наблюдаемые во время теплового шока, не ответственны за индукцию белков теплового шока у Drosophila melanogaster.MolCell Biol 6: 1767–1775.
  23. 23. Wiemann M, Busselberg D, Schirrmacher K, Bingmann D (1998) Высвобождение кальция активировало приток кальция в первичные культуры остеобластоподобных клеток крысы. CalcifTissue Int 63: 154–159.
  24. 24. Colak G, Keillor JW, Johnson GV (2011) Цитозольная форма трансглутаминазы 2 (R580a) с дефицитом связывания гуанин-нуклеедотидов усиливает гибель клеток при недостатке кислорода и глюкозы. PLoSOne 6: e16665.
  25. 25. Кейллор Дж. У., Чика Р. А., Шабо Н., Винчи В., Пардин С. и др.(2008) Биоорганическая химия трансглутаминазы — от механизма к ингибированию и инженерии. CanJChem 86: 271–276.
  26. 26. Pardin C, Roy I, Lubell WD, Keillor JW (2008) Обратимые и конкурентные ингибиторы циннамоилтриазола тканевой трансглутаминазы. ChemBiolDrug Des 72: 189–196.
  27. 27. Kim SY, Jeitner TM, Steinert PM (2001) Transglutaminases and Disease. NeurochemInt 40: 85–103.
  28. 28. Munsie L, Caron N, Atwal RS, Marsden I, Wild EJ и др.(2011) Мутантный хантингтин вызывает дефектное ремоделирование актина во время стресса: определение новой роли трансглутаминазы 2 в нейродегенеративных заболеваниях. HumMolGenet 20: 1937–1951.
  29. 29. Купер AJ, Jeitner TM, Blass JP (2002) Роль трансглутаминаз в нейродегенеративных заболеваниях: обзор. NeurochemInt 40: 1–5.
  30. 30. Jeitner TM, Pinto JT, Красников BF, Horswill M, Cooper AJ (2009) Трансглютаминазы и нейродегенерация. JNeurochem 109 Приложение 1: 160–166.
  31. 31. Kenworthy AK (2001) Визуализация белок-белковых взаимодействий с использованием флуоресцентной резонансной микроскопии с переносом энергии.

alexxlab / 27.06.2021 / Разное

Добавить комментарий

Почта не будет опубликована / Обязательны для заполнения *